致谢 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
前言 | 第8-9页 |
第1章 文献综述 | 第9-25页 |
1.1. 抗氧化剂与自由基概述 | 第9-10页 |
1.2. 自由基对生物大分子损伤的研究进展 | 第10-14页 |
1.2.1. 自由基对DNA的损伤 | 第10-13页 |
1.2.2. 自由基对蛋白质的损伤 | 第13页 |
1.2.3. 自由基对细胞膜的损伤 | 第13-14页 |
1.2.4. 自由基对其它生物大分子的损伤 | 第14页 |
1.3 微弱发光分析在测定清除自由基及对DNA损伤保护作用中的应用和进展 | 第14-17页 |
1.3.1 微弱发光测量原理 | 第15页 |
1.3.2 DNA损伤的微弱发光分析测定 | 第15-17页 |
1.4 茶多酚、银杏提取物、竹叶提取物及某些藻类多糖研究进展 | 第17-25页 |
1.4.1 目前研究的中草药天然抗氧化剂 | 第17-18页 |
1.4.2 茶多酚 | 第18页 |
1.4.3 银杏提取物 | 第18-20页 |
1.4.4 竹叶提取物 | 第20-21页 |
1.4.5 生物学活性 | 第21-24页 |
1.4.6 藻类多糖 | 第24-25页 |
第2章 研究材料、方法与手段 | 第25-29页 |
2.1 研究材料 | 第25页 |
2.2 试剂与仪器 | 第25-26页 |
2.3 方法与手段 | 第26-29页 |
2.3.1 抗氧化剂清除OH°的测定方法——CuSO_4—V_C—H_2O_2—酵母悬浮液体系化学发光检测法 | 第26页 |
2.3.2 抗氧化剂清除O_2~(-°)的测定方法——次黄嘌呤—黄嘌呤氧化酶—鲁米诺体系化学发光检测法 | 第26-27页 |
2.3.3 三种抗氧化剂与DNA作用的测定方法—EB-DNA体系荧光强度检测法 | 第27页 |
2.3.4 抗氧化剂对DNA损伤的保护作用的超微弱发光检测法 | 第27页 |
2.3.5 ~(60)Co-γ辐照 | 第27-29页 |
第3章 实验结果与分析 | 第29-60页 |
3.1 茶多酚、银杏提取物、竹叶提取物清除自由基的作用 | 第29-33页 |
3.1.1 清除OH°中三种抗氧化剂浓度(C)与抑制率(Ⅰ)的关系 | 第29-30页 |
3.1.2 清除O_2~(-°)中三种抗氧化剂浓度(C)与抑制率(Ⅰ)的关系 | 第30-33页 |
3.2. EB荧光探针研究两类物质与DNA的作用 | 第33-42页 |
3.2.1 茶多酚对EB-DNA系统荧光特性的影响 | 第33-34页 |
3.2.2 银杏提取物对EB-DNA系统荧光特性的影响 | 第34-35页 |
3.3.3 竹叶提取物与DNA相互作用后对EB荧光强度的抑制率 | 第35-36页 |
3.2.4 螺旋藻多糖与DNA相互作用后对EB荧光强度的抑制率 | 第36-37页 |
3.2.5 海藻多糖1与DNA相互作用后对EB荧光强度的抑制率 | 第37-38页 |
3.2.6 海藻多糖2与DNA相互作用后对EB荧光强度的抑制率 | 第38-42页 |
3.3. 三种抗氧化剂对DNA辐射损伤的保护作用的研究 | 第42-49页 |
3.3.1 不同剂量γ辐照对EB-DNA荧光特性的影响 | 第42-43页 |
3.3.2 茶多酚、银杏提取物、竹叶提取物不同浓度处理下对辐照EB-DNA荧光特性的影响 | 第43-49页 |
3.4 几种抗氧化剂对CuSO4—Phen—VC—H_2O_2—DNA化学发光体系动力学曲线的影响 | 第49-60页 |
3.4.1 温度对CuSO4—Phen—VC—H_2O_2—DNA化学发光体系动力学曲线影响 | 第49-51页 |
3.4.2 茶多酚浓度对化学发光动力学曲线影响 | 第51-52页 |
3.4.3 银杏提取物浓度对化学发光动力学曲线影响 | 第52-54页 |
3.4.4 竹叶提取物浓度对化学发光动力学曲线影响 | 第54-55页 |
3.4.5 结论 | 第55-58页 |
3.4.6 讨论 | 第58-60页 |
第4章 结语 | 第60-63页 |
4.1 茶多酚、银杏提取物、竹叶提取物具有清除自由基的作用 | 第60页 |
4.2 三种抗氧化剂与DNA的作用关系 | 第60页 |
4.3 三种抗氧化剂对DNA辐射损伤具有保护作用 | 第60-61页 |
4.4 三种抗氧化剂对CuSO4—Phen—VC—H_2O_2—DNA化学发光体系动力学曲线的影响 | 第61页 |
4.5 三种抗氧化剂清除自由基能力与对DNA辐射损伤保护作用的关系 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-66页 |
英文摘要(abstract) | 第66-67页 |