| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-13页 |
| 英文缩略词对照表 | 第13-14页 |
| 1 绪论 | 第14-26页 |
| ·问题的提出与研究意义 | 第14-15页 |
| ·问题的提出 | 第14-15页 |
| ·研究意义 | 第15页 |
| ·国内外研究现状 | 第15-23页 |
| ·新生血管的形成机制 | 第15-16页 |
| ·EPCs 的来源、鉴定和特点 | 第16-17页 |
| ·EPCs 在出生后血管发生中的作用 | 第17-18页 |
| ·SDF-1/CXCR4 在EPCs 参与血管生成中的作用 | 第18-20页 |
| ·SDF-1 新作用受体CXCR7 的主要功能 | 第20-22页 |
| ·微流控技术在体外构建血管生成模型中的应用 | 第22-23页 |
| ·课题的研究目的、研究内容及创新性 | 第23-26页 |
| ·课题的研究目的 | 第23页 |
| ·课题的研究内容 | 第23-25页 |
| ·课题的技术路线 | 第25页 |
| ·课题的特色及创新点 | 第25-26页 |
| 2 大鼠骨髓来源内皮祖细胞的分离培养及鉴定 | 第26-34页 |
| ·引言 | 第26-27页 |
| ·主要实验材料 | 第27-28页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·主要试验试剂及抗体 | 第27页 |
| ·主要实验仪器设备 | 第27-28页 |
| ·主要实验试剂的配制 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| ·EPCs 的分离培养 | 第28-29页 |
| ·EPCs 的鉴定 | 第29-30页 |
| ·实验结果 | 第30-32页 |
| ·细胞形态观察 | 第30页 |
| ·细胞表型分析 | 第30-31页 |
| ·DiI-ac-LDL 摄取和UEA-1 结合功能鉴定 | 第31-32页 |
| ·讨论与分析 | 第32-33页 |
| ·本章小结 | 第33-34页 |
| 3 体外考察 CXCR7 对 EPCs 生物学行为的调节作用 | 第34-60页 |
| ·引言 | 第34-35页 |
| ·实验材料 | 第35-37页 |
| ·主要仪器和耗材 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35-36页 |
| ·主要试剂配制 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-45页 |
| ·EPCs 中CXCR4 和CXCR7 的m RNA 表达检测 | 第37-39页 |
| ·West-bloting 检测EPCs 中CXCR4, CXCR7 的表达 | 第39-41页 |
| ·流式细胞术检测CXCR4 和CXCR7 的表面表达 | 第41页 |
| ·体外考察CXCR4，CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 粘附中的作用 | 第41-42页 |
| ·Transwell 法考察CXCR4,CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 迁移中的作用 | 第42-43页 |
| ·考察CXCR4，CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 跨内皮转移的作用 | 第43页 |
| ·考察CXCR4，CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 增殖中的作用 | 第43-44页 |
| ·考察CXCR4，CXCR7 在SDF-1 阻止EPCs 凋亡中的作用 | 第44页 |
| ·考察CXCR4，CXCR7 在SDF-1 在诱导EPCs 管样结构形成中的作用 | 第44-45页 |
| ·结果分析 | 第45页 |
| ·实验结果 | 第45-55页 |
| ·CXCR4，CXCR7 在EPCs 中的表达 | 第45-46页 |
| ·CXCR4，CXCR7 在EPCs 粘附中的作用 | 第46-47页 |
| ·SDF-1 在调节EPCs 迁移时主要是通过与受体CXCR4 相互作用 | 第47-50页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 两者均在SDF-1 调节EPCs 跨内皮转移过程中起着重要作用 | 第50-51页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 在SDF-1 促进EPCs 增殖行为中的作用 | 第51-53页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 对EPCs 应激条件下存活能力的影响 | 第53页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 对EPCs 管样结构形成能力的影响 | 第53-55页 |
| ·讨论与分析 | 第55-58页 |
| ·CXCR7 在EPCs 粘附和迁移中的作用 | 第57-58页 |
| ·CXCR7 在EPCs 参与血管样结构形成中的作用 | 第58页 |
| ·本章小结 | 第58-60页 |
| 4 基于微流控芯片的体外血管生成模型的建立 | 第60-80页 |
| ·引言 | 第60-61页 |
| ·主要实验材料及仪器设备 | 第61-62页 |
| ·实验材料 | 第61-62页 |
| ·仪器设备 | 第62页 |
| ·实验方法 | 第62-68页 |
| ·微流控芯片的设计 | 第62-63页 |
| ·微流控芯片的制作 | 第63页 |
| ·基质胶的灌注 | 第63-64页 |
| ·在三维凝胶中可溶性因子浓度梯度形成及表征分析 | 第64页 |
| ·微流控通道中细胞的培养及其活性检测 | 第64-65页 |
| ·内皮细胞在促血管生长因子的诱导下增殖能力的考察 | 第65-66页 |
| ·内皮细胞在促血管生长因子浓度梯度的诱导下迁移能力的考察 | 第66-67页 |
| ·促血管生长因子对内皮细胞在三维凝胶中形成管样结构能力的影响 | 第67页 |
| ·实验结果统计分析 | 第67-68页 |
| ·实验结果 | 第68-75页 |
| ·微流控芯片的特征 | 第68页 |
| ·基质胶的灌注 | 第68-69页 |
| ·可溶性因子浓度梯度的形成 | 第69-70页 |
| ·内皮细胞在微流控芯片中的活性分析 | 第70-71页 |
| ·促血管生长因子对3D 生长内皮细胞增殖能力的影响 | 第71-72页 |
| ·在促血管生长因子浓度梯度诱导下，内皮细胞定向迁移到基质胶中 | 第72-74页 |
| ·管样结构的形成 | 第74-75页 |
| ·讨论与分析 | 第75-77页 |
| ·本章小结 | 第77-80页 |
| 5 基于微流控系统考察 CXCR7 在 EPCS 在血管生成中的作用 | 第80-94页 |
| ·引言 | 第80-81页 |
| ·主要实验材料和仪器设备 | 第81页 |
| ·主要试剂 | 第81页 |
| ·主要仪器设备 | 第81页 |
| ·实验方法 | 第81-83页 |
| ·微流控芯片的加工及灭菌处理 | 第81-82页 |
| ·微流控芯片内基质胶的灌注和平衡处理 | 第82页 |
| ·CXCR7 对EPCs 掺入基质能力的影响 | 第82页 |
| ·CXCR7 对EPCs 在3D 凝胶中形成管样结构能力的影响 | 第82-83页 |
| ·MMP 抑制剂对SDF-1 诱导EPCs 掺入基质能力的影响 | 第83页 |
| ·MMP 抑制剂对SDF-1 诱导EPCs 形成管腔样结构能力的影响 | 第83页 |
| ·实验结果 | 第83-90页 |
| ·EPCs 在微流控芯片内的培养 | 第83-84页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 掺入胞外基质的过程中均起着重要的调节作用 | 第84-87页 |
| ·CXCR4 和CXCR7 在SDF-1 诱导EPCs 形成管样结构的能力中均起着重要的调节作用 | 第87-88页 |
| ·MMP 抑制剂阻止SDF-1 诱导EPCs 掺入基质和形成血管样结构 | 第88-89页 |
| ·MMP 抑制剂阻止SDF-1 诱导EPCs 形成血管样结构 | 第89-90页 |
| ·讨论与分析 | 第90-92页 |
| ·本章小结 | 第92-94页 |
| 6 结论与展望 | 第94-96页 |
| ·主要结论 | 第94-95页 |
| ·后续工作展望 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-108页 |
| 附录 | 第108-109页 |
