| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-48页 |
| 第1 节赤潮概述 | 第14-21页 |
| ·赤潮的定义 | 第14页 |
| ·赤潮生物种类 | 第14-15页 |
| ·赤潮藻的分型 | 第15-16页 |
| ·赤潮的危害 | 第16-17页 |
| ·中国赤潮发生的概况 | 第17-18页 |
| ·中国赤潮发生的特点 | 第18-20页 |
| ·中国赤潮研究的概况 | 第20-21页 |
| 第2节 赤潮藻的分子系统学研究及分子标记技术 | 第21-34页 |
| ·核糖体rRNA 基因和转录间隔区 | 第21-27页 |
| ·其它基因作为系统进化分析的分子标记 | 第27-29页 |
| ·多个基因区作为分子标识作系统进化分析 | 第29-30页 |
| ·分子标记(molecular markers) | 第30-34页 |
| 第3节 赤潮藻的分子生物学检测技术 | 第34-48页 |
| ·基于核酸提取的分子生物学检测技术 | 第34-40页 |
| ·全细胞杂交(whole cell hybridization) 技术 | 第40-44页 |
| ·酶联免疫吸附分析技术(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA) | 第44-45页 |
| ·分子生物学检测的辅助设备 | 第45页 |
| ·分子生物学检测技术的应用 | 第45-47页 |
| ·小结与展望 | 第47-48页 |
| 第二章 中国海域几株中肋骨条藻类似硅藻的形态及系统进化分析 | 第48-84页 |
| ·前言 | 第48-49页 |
| ·材料与方法 | 第49-60页 |
| ·实验藻种及培养条件 | 第49-51页 |
| ·LM 观察 | 第51页 |
| ·SEM 观察 | 第51页 |
| ·细胞测量学与数据统计 | 第51-52页 |
| ·细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第52-53页 |
| ·ITS (含5.8S rDNA) 和LSU D1-D2 rDNA 序列的PCR 扩增 | 第53页 |
| ·扩增DNA 的纯化回收 | 第53-54页 |
| ·扩增DNA 的T-A 克隆 | 第54-57页 |
| ·序列分析 | 第57-60页 |
| ·结果 | 第60-76页 |
| ·形态学观察结果 | 第60-70页 |
| ·DNA 的分离 | 第70-71页 |
| ·PCR 及测序 | 第71-72页 |
| ·系统发育分析 | 第72-73页 |
| ·骨条藻间的遗传距离 | 第73-76页 |
| ·讨论 | 第76-84页 |
| ·骨条藻种的划分的形态学标准 | 第76-77页 |
| ·骨条藻种的鉴定及形态学比较 | 第77-79页 |
| ·用ITS 和LSU D1-D2 rDNA 对骨条藻种的鉴定 | 第79-81页 |
| ·骨条藻的地理分布与进化关系 | 第81-82页 |
| ·骨条藻种的多样性 | 第82-84页 |
| 第三章 一株裸甲藻类似种的形态学观察及rDNA 和ITS 序列分析 | 第84-94页 |
| ·前言 | 第84-85页 |
| ·材料与方法 | 第85-86页 |
| ·实验藻种及培养条件 | 第85页 |
| ·LM 观察 | 第85页 |
| ·SEM 观察 | 第85页 |
| ·细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第85页 |
| ·ITS (含5.8S rDNA)和LSU D1-D2 rDNA 序列(以下简称LSU 序列) 的PCR 扩增 | 第85页 |
| ·扩增DNA 的纯化回收、克隆和测序 | 第85页 |
| ·序列分析 | 第85-86页 |
| ·结果 | 第86-92页 |
| ·形态学观察结果 | 第86-89页 |
| ·DNA 的分离 | 第89页 |
| ·PCR 及测序 | 第89页 |
| ·序列分析 | 第89-90页 |
| ·系统树分析 | 第90-92页 |
| ·讨论 | 第92-94页 |
| 第四章 赤潮异湾藻的全细胞FISH 检测 | 第94-113页 |
| ·前言 | 第94-96页 |
| ·材料与方法 | 第96-101页 |
| ·实验藻种及培养条件 | 第96页 |
| ·细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第96页 |
| ·LSU 和ITS 序列的PCR 扩增 | 第96页 |
| ·扩增DNA 的纯化回收、克隆与测序 | 第96页 |
| ·序列分析 | 第96页 |
| ·寡核甘酸探针的设计 | 第96-98页 |
| ·赤潮异湾藻的固定测试 | 第98-99页 |
| ·荧光原位杂交 | 第99-100页 |
| ·探针的交叉反应测试 | 第100页 |
| ·细胞周期内荧光信号和FISH 检测率的比较 | 第100-101页 |
| ·图像采集及分析 | 第101页 |
| ·数理统计方法 | 第101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-113页 |
| ·杂交流程的建立和优化 | 第101-105页 |
| ·用优化的杂交流程对赤潮异湾藻进行特异性的检测 | 第105-108页 |
| ·赤潮异湾藻的不同生长阶段对FISH 检测的影响 | 第108-109页 |
| ·建立的FISH 与其它检测赤潮异湾藻的方法的比较 | 第109-111页 |
| ·FISH 的应用前景 | 第111-113页 |
| 第五章 海洋原甲藻的全细胞FISH 检测 | 第113-121页 |
| ·前言 | 第113页 |
| ·材料与方法 | 第113-117页 |
| ·实验藻种及培养条件 | 第113-114页 |
| ·细胞总DNA 的提取和质量检测 | 第114页 |
| ·LSU D1-D2 rDNA 序列(以下简称LSU 序列)和ITS 序列(含ITS1、ITS2 和5.8S rDNA，以下同)的PCR 扩增 | 第114-115页 |
| ·扩增DNA 的纯化回收与测序 | 第115页 |
| ·序列分析 | 第115页 |
| ·寡核甘酸探针的设计 | 第115-116页 |
| ·全细胞荧光原位杂交 | 第116页 |
| ·探针的特异性测试 | 第116页 |
| ·图像采集及分析 | 第116-117页 |
| ·结果与讨论 | 第117-121页 |
| ·原位杂交方法 | 第117页 |
| ·探针的特异性 | 第117-121页 |
| 第六章 小结 | 第121-123页 |
| ·主要研究结果或结论 | 第121页 |
| ·研究的不足 | 第121-122页 |
| ·下一步需要做的工作 | 第122-123页 |
| 参考文献 | 第123-149页 |
| 在读博士期间论文发表情况 | 第149-151页 |
| 致谢 | 第151页 |
