| 第一章 绪论 | 第1-21页 |
| ·研究的目的和意义 | 第11-14页 |
| ·生物法提取草本纤维是国内外生物质产业的发展方向 | 第11页 |
| ·CXJZ95-198菌株提取草本纤维表现出广谱性和高效性 | 第11-12页 |
| ·甘露聚糖的分子结构与降解 | 第12-13页 |
| ·甘露聚糖酶的应用前景十分广阔 | 第13-14页 |
| ·国内外甘露聚糖酶研究现状 | 第14-19页 |
| ·甘露聚糖酶的来源 | 第14-16页 |
| ·甘露聚糖酶的性质 | 第16-17页 |
| ·甘露聚糖酶的分类、结构分析 | 第17-18页 |
| ·甘露聚糖酶表达条件的优化 | 第18-19页 |
| ·国内外甘露聚糖酶基因的分子遗传学研究现状 | 第19-20页 |
| ·甘露聚糖酶基因克隆 | 第19页 |
| ·甘露聚糖酶基因的结构分析 | 第19-20页 |
| ·Erwinia属菌种的基因组学研究现状 | 第20-21页 |
| 第二章 CXJZ95—198非纤维素降解特性研究 | 第21-30页 |
| ·试验材料与方法 | 第21-22页 |
| ·试验材料 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-22页 |
| ·试验结果 | 第22-28页 |
| ·CXJZ95-198的营养特性 | 第22-23页 |
| ·草料发酵过程中有机物的变化规律 | 第23-26页 |
| ·草料加工过程中的重量变化规律 | 第26-27页 |
| ·生物脱胶苎麻精干麻中非纤维素物质残留量 | 第27-28页 |
| ·结论与讨论 | 第28-30页 |
| ·草本纤维生物提取工艺的基本特征 | 第28-29页 |
| ·“块状崩溃”假说的基本内涵 | 第29页 |
| ·甘露聚糖酶是“块状崩溃”假说的关键因子 | 第29-30页 |
| 第三章 CXJZ95-198甘露聚糖酶基因的克隆与表达 | 第30-61页 |
| ·实验方法和材料 | 第30-36页 |
| ·试验材料 | 第30-31页 |
| ·试验方法 | 第31-36页 |
| ·试验结果 | 第36-58页 |
| ·基因组DNA部分酶切的条件优化 | 第36-39页 |
| ·阳性克隆的鉴定 | 第39-41页 |
| ·甘露聚糖酶基因的DNA序列 | 第41-47页 |
| ·甘露聚糖酶基因的序列分析 | 第47-51页 |
| ·表达载体的构建 | 第51-52页 |
| ·表达载体的序列鉴定 | 第52-53页 |
| ·不同表达载体的表达情况研究 | 第53-55页 |
| ·不同IPTG浓度与温度对表达的影响 | 第55-57页 |
| ·重组甘露聚糖酶的酶学研究 | 第57-58页 |
| ·结论与讨论 | 第58-61页 |
| 第四章 结论 | 第61-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 附录 | 第73-89页 |
| 附录1.氨基酸的多序列比对(CLUSTAL W(1.82) multiple sequence alignment) | 第73-78页 |
| 附录2.E.carotovora基因组4449335—444967序列的编码情况 | 第78-79页 |
| 附录3.所克隆基因GenBank登陆号与序列DQ364440 | 第79-81页 |
| 附件4：结构域预测 | 第81-82页 |
| 附件5：pT5序列测定 | 第82-83页 |
| 附件6：FR1序列测定 | 第83-85页 |
| 附件7：FR2序列测定 | 第85-87页 |
| 附件8：FR4序列测定 | 第87-89页 |
| 作者简历 | 第89-90页 |
