| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 1 前言 | 第9-20页 |
| ·卵母细胞获能 | 第9-10页 |
| ·体外抑制卵母细胞减数分裂恢复的方法和试剂 | 第10-13页 |
| ·ROS和BL-I的研究 | 第13-18页 |
| ·卵丘细胞在卵母细胞体外成熟过程中的作用 | 第18-19页 |
| ·卵母细胞生发泡(GV)染色质构型 | 第19页 |
| ·本文主要的研究内容 | 第19-20页 |
| 2 材料方法 | 第20-24页 |
| ·卵母细胞的获取 | 第20页 |
| ·卵母细胞培养 | 第20-21页 |
| ·卵母细胞的孤雌激活 | 第21页 |
| ·孤雌激活胚胎的体外培养 | 第21页 |
| ·卵母细胞核形态的判定 | 第21-22页 |
| ·卵母细胞GV染色质构型的观察 | 第22-23页 |
| ·数据统计分析 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-34页 |
| ·BL-I和ROS抑制山羊卵母细胞减数分裂的最适浓度 | 第24页 |
| ·解除抑制转为正常培养后山羊卵母细胞的成熟和激活情况 | 第24-25页 |
| ·解除抑制后成熟卵母细胞孤雌胚胎的体外发育 | 第25-26页 |
| ·ROS抑制不同时间转为正常培养后卵母细胞的成熟、激活和发育情况 | 第26-27页 |
| ·ROS抑制不同时间对山羊卵母细胞GV染色质构型的影响 | 第27页 |
| ·ROS对山羊裸卵(DOs)的抑制 | 第27-28页 |
| ·不同浓度ROS对山羊DOs的抑制作用 | 第28页 |
| ·抑制过程中和抑制后转为正常成熟过程中卵丘细胞对山羊DOs成熟的作用 | 第28-29页 |
| ·抑制培养液中添加PMSG对COCs和DOs抑制的影响 | 第29页 |
| ·正常成熟核进程和抑制后放开成熟过程中核进程 | 第29-31页 |
| ·对照和抑制后放开卵母细胞体外核成熟各时相出现的时间 | 第31-32页 |
| ·ROS对小卵泡卵母细胞减数分裂恢复的抑制及抑制后卵母细胞的成熟、激活和发育(卵泡直径为0.8—1.2mm) | 第32-33页 |
| ·ROS抑制不同时间后山羊小卵泡卵母细胞GV染色质构型(卵泡直径0.8—1.2mm) | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-41页 |
| ·ROS和BL-I的有效作用浓度 | 第34-35页 |
| ·抑制24h降低山羊卵母细胞早期发育能力 | 第35-36页 |
| ·缩短抑制时间能提高卵母细胞的发育能力和卵丘扩展能力 | 第36页 |
| ·抑制后卵母细胞的GV染色质构型 | 第36-38页 |
| ·对裸卵的抑制 | 第38页 |
| ·抑制后核进程加快 | 第38-40页 |
| ·抑制可以增加山羊小卵泡卵母细胞的成熟和发育能力 | 第40-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-51页 |
| 图版及图版说明 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第56页 |
