| 第一章 前言 | 第1-20页 |
| ·野油菜黄单胞菌(Xanthomonas campestris)概况 | 第7页 |
| ·植物病原细菌与寄主的相互作用 | 第7-14页 |
| ·植物病原细菌的致病因子 | 第8-11页 |
| ·植物病原细菌的致病相关基因 | 第11-12页 |
| ·植物病原细菌致病生化因子的分泌机制 | 第12页 |
| ·植物病原细菌与致病有关的调控系统 | 第12-14页 |
| ·细菌在感受植物信号方面的研究进展 | 第14-19页 |
| ·革兰氏阴性植物病原细菌的hrp基因及其表达调控 | 第15-16页 |
| ·Ralstonia solanacearum中感受植物信号的基因 | 第16-19页 |
| ·本工作的目的与内容 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-34页 |
| ·材料 | 第20-25页 |
| ·本实验所用的菌株和质粒见表 | 第20-21页 |
| ·培养基及生长条件 | 第21-23页 |
| ·抗生素及其贮存、使用浓度 | 第23页 |
| ·溶液与缓冲液 | 第23-25页 |
| ·方法 | 第25-34页 |
| ·三亲本接合 | 第25-26页 |
| ·常规PCR反应 | 第26-28页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
| ·PCR产物的回收与纯化 | 第28页 |
| ·质粒的提取 | 第28-29页 |
| ·限制性内切酶酶切 | 第29页 |
| ·DNA连接 | 第29页 |
| ·电脉冲感受态细胞的制备 | 第29-30页 |
| ·转化 | 第30页 |
| ·总DNA的提取 | 第30页 |
| ·胞外多糖的检测 | 第30-31页 |
| ·胞外酶的检测 | 第31页 |
| ·植株的致病性试验 | 第31页 |
| ·GUS组织化学染色检测 | 第31-32页 |
| ·将质粒pK18mob改造成pT18mob | 第32页 |
| ·Xcc 8004基因组上目标基因的整合突变体的构建 | 第32-34页 |
| 第三章 结果与分析 | 第34-59页 |
| ·野油菜黄单胞菌中存在与茄青枯病罗尔斯通氏菌感受植物信号基因同源的基因 | 第34-41页 |
| ·XC3665、XC4121所编码的蛋白的氨基酸序列与prhA的氨基酸序列相似 | 第34-37页 |
| ·XC0755、XC4024所编码的蛋白的氨基酸序列与prhJ的氨基酸序列相似 | 第37-39页 |
| ·XC0519所编码的蛋白的氨基酸序列与prhI的氨基酸序列相似 | 第39页 |
| ·XC0520所编码的蛋白的氨基酸序列与prhR的氨基酸序列相似 | 第39-41页 |
| ·hrp基因GUS报告系统的构建 | 第41-45页 |
| ·hrp基因Tn5gusA5插入突变体的构建 | 第41-42页 |
| ·将自杀质粒pK18mob(Km~r)改造成pT18mob(Tc~r) | 第42页 |
| ·双突变体的构建 | 第42-45页 |
| ·双突变体的GUS报告系统表达检测 | 第45-48页 |
| ·突变体的平板GUS检测 | 第45-46页 |
| ·突变体的叶内GUS染色 | 第46-47页 |
| ·突变体的平板检测 | 第47-48页 |
| ·双突变体的致病性检测 | 第48-49页 |
| ·XC0519与致病的关系 | 第49-50页 |
| ·XC0519 Tn5gusA5插入突变体(214H01)的致病性检测 | 第50-51页 |
| ·214H01的互补试验 | 第51-53页 |
| ·互补菌株的构建 | 第51-52页 |
| ·互补菌株的致病性实验 | 第52-53页 |
| ·定点突变体的构建 | 第53-54页 |
| ·定点突变体的致病性检测 | 第54-56页 |
| ·突变体的生长测定 | 第56-57页 |
| ·突变体在完全培养基中的生长测定 | 第56页 |
| ·突变体在基本培养基中的生长测定 | 第56-57页 |
| ·XC0519和XC0520的突变不影响Xcc的胞外多糖和胞外酶 | 第57-59页 |
| 第四章 讨论 | 第59-61页 |
| ·XC0519和XC0520与hrp基因表达调控的关系 | 第59-60页 |
| ·XC0519和XC0520与致病性的关系 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
