摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-12页 |
第一部分 文献综述 | 第12-25页 |
前言 | 第13页 |
1 动物细胞体外培养简史 | 第13-14页 |
2 动物细胞体外培养的主要环节 | 第14-19页 |
·原代细胞的获得及培养 | 第14-17页 |
·酶消化法 | 第15-16页 |
·组织块培养法 | 第16-17页 |
·传代培养 | 第17页 |
·细胞的冻存和复苏 | 第17-19页 |
3 细胞在体外的生长过程 | 第19-21页 |
·细胞体外培养的整个生长过程 | 第19-20页 |
·细胞在体外培养一代内的生长过程 | 第20-21页 |
4 影响动物细胞体外生长的因素 | 第21-24页 |
·培养基对细胞生长的影响 | 第21-22页 |
·合成培养基 | 第21页 |
·天然培养基 | 第21-22页 |
·促细胞生长物质 | 第22页 |
·物理化学因素的影响 | 第22-23页 |
·pH及气相 | 第22-23页 |
·温度 | 第23页 |
·渗透压 | 第23页 |
·微生物污染 | 第23页 |
·其他因素 | 第23-24页 |
5 本试验研究的目的和意义 | 第24-25页 |
第二部分 试验研究 | 第25-50页 |
第一章 食蟹猴耳部成纤维细胞体外培养体系的初步建立 | 第26-41页 |
第一节 前言 | 第26页 |
第二节 材料和方法 | 第26-30页 |
·材料 | 第26-28页 |
·试验材料 | 第26页 |
·主要试剂及药品 | 第26-27页 |
·主要仪器设备及耗材 | 第27页 |
·主要溶液配制 | 第27-28页 |
·试验方法 | 第28-30页 |
·食蟹猴耳部皮肤成纤维细胞的分离和体外培养 | 第28-29页 |
·细胞活力检测 | 第29页 |
·细胞生长曲线的绘制 | 第29页 |
·细胞染色体制备 | 第29-30页 |
·数据统计方法 | 第30页 |
第三节 结果与分析 | 第30-34页 |
·食蟹猴耳部成纤维细胞体外培养的形态学观察 | 第30-31页 |
·原代细胞的生长情况 | 第30-31页 |
·细胞的传代培养 | 第31页 |
·细胞的冻存与复苏 | 第31-32页 |
·细胞生长曲线绘制 | 第32页 |
·细胞染色体倍性分析 | 第32-34页 |
第四节 讨论 | 第34-39页 |
·食蟹猴耳部成纤维细胞的分离和原代培养 | 第34-35页 |
·成纤维细胞的传代培养 | 第35-36页 |
·细胞生长曲线的绘制 | 第36-37页 |
·细胞的冻存与复苏 | 第37-38页 |
·染色体倍性分析 | 第38-39页 |
第五节 小结 | 第39-41页 |
第二章 EGF、Insulin和IGF-I对体外培养的食蟹猴耳部成纤维细胞增殖的影响 | 第41-50页 |
第一节 前言 | 第41页 |
第二节 材料和方法 | 第41-42页 |
·试验材料 | 第41-42页 |
·试验动物 | 第41页 |
·主要试剂及药品 | 第41页 |
·主要仪器 | 第41-42页 |
·主要溶液配制 | 第42页 |
·试验方法 | 第42页 |
·耳部成纤维细胞的培养 | 第42页 |
·用MTT比色法检测添加不同物质对食蟹猴耳部成纤维细胞增殖的影响 | 第42页 |
·试验设计 | 第42页 |
·数据统计方法 | 第42页 |
第三节 结果与分析 | 第42-46页 |
·不同浓度EGF对食蟹猴耳部皮肤成纤维细胞增殖的影响 | 第43-44页 |
·不同浓度胰岛素对食蟹猴耳部皮肤成纤维细胞增殖的影响 | 第44-45页 |
·不同浓度IGF-I对食蟹猴耳部皮肤成纤维细胞增殖的影响 | 第45-46页 |
第四节 讨论 | 第46-48页 |
·MTT比色法在检测细胞增殖的应用及其影响因素 | 第46页 |
·EGF对细胞增殖的影响 | 第46-47页 |
·胰岛素对细胞增殖的影响 | 第47-48页 |
·IGF-I对细胞增殖的影响 | 第48页 |
第五节 小结 | 第48-50页 |
第三部分 总结和结论 | 第50-52页 |
1、总结 | 第50-51页 |
2、结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-61页 |
附录 | 第61-62页 |
附图 | 第62-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第66页 |