喜马拉雅旱獭不同地理种群的遗传多态性分析
| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1.引言 | 第10-18页 |
| ·喜马拉雅旱獭 | 第10-13页 |
| ·简介 | 第10-11页 |
| ·喜马拉雅旱獭国内研究现状 | 第11-12页 |
| ·旱獭国际研究现状 | 第12-13页 |
| ·微卫星研究 | 第13-18页 |
| ·微卫星的定义及发现 | 第13页 |
| ·微卫星的分布 | 第13页 |
| ·微卫星的分类 | 第13-14页 |
| ·微卫星突变的机制及影响因素 | 第14页 |
| ·微卫星及遗传标记 | 第14-15页 |
| ·微卫星位点的分离 | 第15-16页 |
| ·微卫星标记的数据分析 | 第16页 |
| ·微卫星的应用 | 第16-18页 |
| ·微卫星标记的不足之处及发展前景 | 第18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18页 |
| 2.材料和方法 | 第18-29页 |
| ·材料 | 第18-22页 |
| ·动物材料 | 第18页 |
| ·菌株和质粒 | 第18-19页 |
| ·主要药品和试剂 | 第19页 |
| ·主要试验仪器 | 第19-20页 |
| ·引物 | 第20页 |
| ·分析工具软件及网址 | 第20页 |
| ·试验所用溶液的配制 | 第20-22页 |
| ·方法 | 第22-29页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第22页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第22-23页 |
| ·喜马拉雅旱獭基因组部分文库的构建 | 第23-26页 |
| ·喜马拉雅旱獭基因组DNA的提取 | 第23页 |
| ·pUC19质粒的酶切与载体制备 | 第23-24页 |
| ·喜马拉雅旱獭总DNA的酶切 | 第24页 |
| ·目的片断的回收 | 第24-25页 |
| ·连接反应 | 第25页 |
| ·转化 | 第25-26页 |
| ·重组质粒的提取 | 第26页 |
| ·PCR法筛选含微卫星序列的阳性克隆 | 第26页 |
| ·阳性序列测定 | 第26-27页 |
| ·测序结果分析 | 第27页 |
| ·微卫星引物设计 | 第27页 |
| ·微卫星引物的初步筛选 | 第27-28页 |
| ·模板DNA | 第27页 |
| ·引物的溶解与稀释 | 第27页 |
| ·PCR扩增和初步电泳检测 | 第27-28页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第28页 |
| ·数据统计分析 | 第28-29页 |
| 3.结果与分析 | 第29-40页 |
| ·标本基因组DNA的鉴定与DNA质量的标准化 | 第29-30页 |
| ·喜马拉雅旱獭基因组DNA的酶切结果 | 第30页 |
| ·载体的制备与酶切鉴定 | 第30-31页 |
| ·基因组文库的构建 | 第31页 |
| ·PCR法筛选含微卫星的阳性克隆的结果 | 第31页 |
| ·微卫星引物的初步筛选结果 | 第31-32页 |
| ·阳性克隆的测序结果 | 第32-33页 |
| ·引物的设计与合成 | 第33-35页 |
| ·数据分析 | 第35-39页 |
| ·种群间的遗传距离及聚类分析 | 第39-40页 |
| 4.讨论 | 第40-43页 |
| ·样品的提取及纯化方法 | 第40页 |
| ·PCR反应 | 第40-42页 |
| ·引物 | 第40-41页 |
| ·模板 | 第41页 |
| ·Taq DNA聚合酶 | 第41-42页 |
| ·dNTP和Mg~(2+) | 第42页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第42-43页 |
| ·电压 | 第42页 |
| ·染色 | 第42-43页 |
| 5.结论 | 第43-46页 |
| ·喜马拉雅旱獭遗传多样性 | 第43页 |
| ·不同地理种群的遗传距离 | 第43-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 附录1 | 第51-55页 |
| 附录2 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
