| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-21页 |
| ·抗原呈递的原理 | 第9-10页 |
| ·抗原呈递细胞 | 第10页 |
| ·主要组织相容性复合物 | 第10-13页 |
| ·抗原呈递过程 | 第13-15页 |
| ·恒定链在抗原呈递过程中的作用 | 第15-19页 |
| ·鱼类恒定链研究进展 | 第19页 |
| ·本课题的研究意义 | 第19-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-37页 |
| ·实验动物与试剂 | 第21-22页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22页 |
| ·实验材料与方法 | 第22-37页 |
| ·鲤鱼RNA 提取 | 第22页 |
| ·鲤鱼cDNA 的合成 | 第22-23页 |
| ·鲤鱼Iclp-1，Iclp-2 及Cathepsin L 基因的克隆 | 第23-24页 |
| ·PCR 产物纯化 | 第24页 |
| ·DNA 片段的连接 | 第24页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第24-25页 |
| ·T 连接产物的转化 | 第25-26页 |
| ·质粒的提取 | 第26页 |
| ·质粒的酶切鉴定 | 第26-27页 |
| ·粘末端DNA 片断的连接 | 第27页 |
| ·转化及重组子的筛选 | 第27页 |
| ·重组蛋白最佳诱导表达时间的确定 | 第27页 |
| ·变性条件下重组蛋白的纯化 | 第27-28页 |
| ·纯化包涵体 | 第28-29页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第29-30页 |
| ·多克隆抗体的制备 | 第30-31页 |
| ·兔血清抗体纯化 | 第31页 |
| ·间接法ELISA 检验抗体效价 | 第31-32页 |
| ·鲤鱼组织中两种Iclp 蛋白的Western Blotting 检测 | 第32-34页 |
| ·鲤鱼头肾中组织蛋白酶活性检测 | 第34页 |
| ·组织裂解液对rIclp 的剪切作用 | 第34页 |
| ·鲤鱼巨噬细胞分离培养 | 第34-35页 |
| ·LPS 刺激后巨噬细胞中Iclp m RNA 水平表达变化 | 第35-36页 |
| ·吞噬后巨噬细胞中Iclp 状态检测及组织蛋白酶活性检测 | 第36-37页 |
| 第3章 鲤鱼体内恒定链的鉴定 | 第37-46页 |
| ·鲤鱼Iclp-1 及Iclp-2 基因的重组表达及纯化 | 第37-38页 |
| ·多克隆抗体效价 | 第38-40页 |
| ·LPS 刺激后巨噬细胞中Iclp 表达量变化 | 第40-41页 |
| ·鲤鱼组织中Iclp 蛋白的检测 | 第41页 |
| ·rIclp 蛋白被头肾组织裂解液剪切情况 | 第41-43页 |
| ·讨论 | 第43-46页 |
| 第4章 组织蛋白酶对Iclp-1 的剪切作用 | 第46-55页 |
| ·鲤鱼组织蛋白酶L 的重组表达 | 第46-47页 |
| ·鲤鱼组织蛋白酶L 的抗体制备 | 第47页 |
| ·鲤鱼组织蛋白酶L 的组织分布检测 | 第47-48页 |
| ·鲤鱼头肾中组织蛋白酶总活性检测 | 第48-50页 |
| ·组织蛋白酶对rIclp-1 的剪切 | 第50-51页 |
| ·巨噬细胞内组织蛋白酶对Iclp-1 的剪切作用 | 第51-52页 |
| ·巨噬细胞抗原呈递过程中组织蛋白酶活性变化 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 个人简历 | 第61页 |
