| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-18页 |
| ·文献综述 | 第12-16页 |
| ·紫花苜蓿遗传转化受体研究进展 | 第12-13页 |
| ·紫花苜蓿遗传转化研究进展 | 第13-14页 |
| ·紫花苜蓿应用转基因技术进行遗传改良研究现状 | 第14-16页 |
| ·转基因苜蓿存在的问题 | 第16页 |
| ·转基因苜蓿的发展趋势和应用前景 | 第16页 |
| ·研究目的和意义 | 第16-18页 |
| 第二章 不同紫花苜蓿品种高效再生体系的建立和优化 | 第18-28页 |
| ·材料与方法 | 第18-20页 |
| ·试验材料 | 第18页 |
| ·培养基 | 第18-20页 |
| ·评价指标 | 第20页 |
| ·试验方法 | 第20-21页 |
| ·无菌苗的培养 | 第20页 |
| ·外植体的制备 | 第20-21页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第21页 |
| ·愈伤组织的继代 | 第21页 |
| ·愈伤组织的分化 | 第21页 |
| ·再生植株的获得 | 第21页 |
| ·结果与分析 | 第21-26页 |
| ·培养基对愈伤诱导及分化率的影响 | 第21-24页 |
| ·不同品种对胚性愈伤率的影响 | 第24-25页 |
| ·不同外植体对胚性愈伤率的影响 | 第25-26页 |
| ·讨论 | 第26-28页 |
| ·培养基对愈伤诱导的影响 | 第26页 |
| ·基因型对愈伤诱导的影响 | 第26页 |
| ·外植体对愈伤诱导的影响 | 第26-27页 |
| ·AgNO_3对胚性愈伤率的影响 | 第27页 |
| ·KT对愈伤组织分化的影响 | 第27页 |
| ·无菌苗对愈伤组织的影响 | 第27-28页 |
| 第三章 根癌农杆菌介导的CBF1基因转化体系的建立 | 第28-38页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·受体材料 | 第28页 |
| ·农杆菌菌株 | 第28页 |
| ·培养基类型 | 第28-29页 |
| ·方法 | 第29-30页 |
| ·选择培养基中抗菌素及其浓度的确定 | 第29页 |
| ·抗菌素对苜蓿胚性愈伤组织诱导的影响及共培养基的确定 | 第29页 |
| ·选择培养中Kan选择压的确定 | 第29页 |
| ·GUS组织化学染色分析 | 第29页 |
| ·遗传转化体系的优化 | 第29-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-36页 |
| ·选择培养基中抗菌素及其浓度的确定 | 第30-31页 |
| ·选择培养中选择压的确定 | 第31-32页 |
| ·遗传转化体系的优化 | 第32-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| ·农杆菌菌株对转化的影响 | 第36页 |
| ·不同受体对转化的影响 | 第36页 |
| ·筛选体系对转化效率的影响 | 第36-38页 |
| 第四章 紫花苜蓿转化植株的PCR检测 | 第38-42页 |
| ·材料与方法 | 第38-39页 |
| ·材料 | 第38页 |
| ·方法 | 第38页 |
| ·PCR扩增及电泳检测 | 第38-39页 |
| ·PCR扩增结果 | 第39-40页 |
| ·农杆菌质粒DNA的PCR扩增结果 | 第39-40页 |
| ·转化植株DNA的PCR扩增结果 | 第40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| ·转化植株DNA的提取 | 第40页 |
| ·PCR分子标记的不可靠性 | 第40-42页 |
| 第五章 全文结论 | 第42-43页 |
| ·建立和优化了紫花苜蓿高效再生体系 | 第42页 |
| ·建立了根癌农杆菌介导的CBF1基因的遗传转化体系 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简历 | 第50页 |
