| 致谢 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 缩略词表 | 第11-16页 |
| 1 引言 | 第16-30页 |
| ·植物逆境响应概述 | 第16-17页 |
| ·活性氧在植物逆境响应中的信号功能 | 第17-18页 |
| ·植物逆境响应的信号转导途径 | 第18-21页 |
| ·Ca~(2+)偶联的磷酸级联反应 | 第18-19页 |
| ·MAPK级联反应在逆境信号转导中的功能 | 第19页 |
| ·植物逆境响应的转录调控 | 第19-20页 |
| ·植物激素与逆境响应 | 第20-21页 |
| ·油菜素内酯的合成与运输 | 第21-23页 |
| ·BR的生物合成途径 | 第22页 |
| ·BR合成基因的反馈调控 | 第22-23页 |
| ·BR的运输 | 第23页 |
| ·BR的信号转导途径 | 第23-25页 |
| ·BR信号转导的工作模型 | 第23-24页 |
| ·BR信号转导与植物防御的关系 | 第24-25页 |
| ·BR对植物环境适应性的调控 | 第25-27页 |
| ·BR介导的渗透胁迫抗性 | 第25-26页 |
| ·BR介导的高温抗性 | 第26页 |
| ·BR介导的病害抗性 | 第26-27页 |
| ·本文的研究目的 | 第27-30页 |
| 2 BR通过调控Rubisco活化酶和Calvin循环基因提高光合作用 | 第30-44页 |
| ·材料与方法 | 第31-35页 |
| ·材料培养和实验设计 | 第31-32页 |
| ·光合气体交换与叶绿素荧光测定 | 第32页 |
| ·叶绿素和可溶性蛋白测定 | 第32页 |
| ·Rubisco含量测定 | 第32-33页 |
| ·Western印迹分析 | 第33页 |
| ·Rubisco活化酶免疫金标记 | 第33-34页 |
| ·总RNA提取及cDNA合成 | 第34页 |
| ·Northern杂交 | 第34页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第34-35页 |
| ·结果 | 第35-40页 |
| ·BR水平对植株生长的影响 | 第35-37页 |
| ·BR对光合气体交换和叶绿素荧光的影响 | 第37页 |
| ·BR水平对Rubisco羧化和RuBP再生能力的影响 | 第37-38页 |
| ·BR水平对rca,rbcS和rbcL表达的影响 | 第38-40页 |
| ·BR水平对Calvin循环基因表达的影响 | 第40页 |
| ·讨论 | 第40-44页 |
| 3 BR提高黄瓜广谱抗性及其对逆境响应基因的调控 | 第44-56页 |
| ·材料与方法 | 第46-49页 |
| ·植物材料与处理 | 第46页 |
| ·叶绿素荧光成像分析 | 第46页 |
| ·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第46-47页 |
| ·水杨酸含量测定 | 第47页 |
| ·细胞器抗氧化酶测定 | 第47-48页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第48-49页 |
| ·结果 | 第49-54页 |
| ·BR诱导黄瓜广谱抗性 | 第49-51页 |
| ·BR对水杨酸(SA)含量的影响 | 第51页 |
| ·BR对不同细胞器内抗氧化酶活力的影响 | 第51-53页 |
| ·BR对逆境响应基因表达的影响 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| 4 H_2O_2是BR调控作物抗逆反应的关键信号 | 第56-69页 |
| ·材料与方法 | 第57-60页 |
| ·植物材料与处理 | 第57-58页 |
| ·O_2和H_2O_2组织化学染色 | 第58页 |
| ·H_2O_2亚细胞染色 | 第58页 |
| ·叶片组织H_2O_2含量测定 | 第58-59页 |
| ·细胞膜提取及NADPH氧化酶活力测定 | 第59页 |
| ·叶片组织抗氧化酶测定 | 第59-60页 |
| ·总RNA提取和基因表达同第三章 | 第60页 |
| ·结果 | 第60-69页 |
| ·BR对ROS含量的影响 | 第60页 |
| ·H_2O_2参与BR介导的广谱抗性 | 第60-62页 |
| ·H_2O_2含量与抗性变化的关系 | 第62-64页 |
| ·BR诱导基因表达和抗氧化酶活力的时间变化 | 第64-69页 |
| 5 H_2O_2介导油菜素内酯诱导的系统抗性 | 第69-79页 |
| ·材料与方法 | 第71页 |
| ·植物材料与处理 | 第71页 |
| ·Fv/Fm、H_2O_2含量、基因表达和抗氧化酶活力测定 | 第71页 |
| ·维管组织H_2O_2检测 | 第71页 |
| ·结果 | 第71-77页 |
| ·EBR对黄瓜系统抗性的影响 | 第71-72页 |
| ·H_2O_2参与EBR诱导的系统抗性 | 第72-77页 |
| ·讨论 | 第77-79页 |
| 6 BR能够提高黄瓜对农药化学胁迫的抗性 | 第79-88页 |
| ·材料与方法 | 第80页 |
| ·植物材料与处理 | 第80页 |
| ·实验方法 | 第80页 |
| ·结果 | 第80-85页 |
| ·EBR和农药处理对光合作用气体交换参数的影响 | 第80-83页 |
| ·EBR和农药处理对叶绿素荧光参数的影响 | 第83-85页 |
| ·讨论 | 第85-88页 |
| 7 BR通过提高农药代谢相关酶活力和基因表达促进农药代谢 | 第88-102页 |
| ·材料与方法 | 第90-92页 |
| ·植物材料与处理 | 第90页 |
| ·光合气体交换和叶绿素荧光测定 | 第90页 |
| ·农药残留测定 | 第90-91页 |
| ·农药解毒酶活力测定 | 第91页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第91-92页 |
| ·结果 | 第92-98页 |
| ·EBR对毒死蜱药害的缓解作用 | 第92页 |
| ·EBR对毒死蜱残留的影响 | 第92-94页 |
| ·EBR对解毒酶活力的影响 | 第94-96页 |
| ·EBR对解毒基因表达的影响 | 第96页 |
| ·EBR对氯氰菊酯、百菌清和多菌灵代谢的影响 | 第96-98页 |
| ·讨论 | 第98-102页 |
| 8 结论 | 第102-106页 |
| 参考文献 | 第106-126页 |
