| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1 L型氨基酸转运蛋白研究进展 | 第11-16页 |
| ·氨基酸转运系统划分 | 第12页 |
| ·L-氨基酸转运蛋白结构 | 第12-14页 |
| ·L-氨基酸转运蛋白的生理特性 | 第14-16页 |
| 2 小肽转运蛋白的研究进展 | 第16-20页 |
| ·小肽转运蛋白结构特性 | 第17页 |
| ·小肽转运蛋白的生物特性 | 第17-20页 |
| 3 L-氨基酸转运蛋白和小肽转运蛋白研究意义 | 第20-21页 |
| 第二章 LAT2cDNA基因全长克隆与序列生物信息分析 | 第21-40页 |
| 1 材料 | 第21-22页 |
| ·试验动物与试剂 | 第21页 |
| ·试剂 | 第21页 |
| ·仪器 | 第21-22页 |
| 2 方法 | 第22-27页 |
| ·总RNA制备 | 第22-23页 |
| ·LAT2cDNA中间片段克隆 | 第23-25页 |
| ·LAT2cDNA 3`和5`片段克隆 | 第25-27页 |
| ·序列拼接 | 第27页 |
| ·LAT2cDNA全长序列分析 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-36页 |
| ·肝组织总RNA制备效果 | 第27-28页 |
| ·LAT2cDNA中间片段克隆 | 第28页 |
| ·LAT2cDNA3`和5`克隆 | 第28页 |
| ·序列拼接结果 | 第28-29页 |
| ·LAT2cDNA全长生物信息分析结果 | 第29-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| ·试验步骤和方法讨论 | 第36-38页 |
| ·LAT2cDNA基因的特性 | 第38页 |
| ·LAT2活性 | 第38-40页 |
| 第三章 PEPT1cDNA基因全长克隆与序列生物信息分析 | 第40-52页 |
| 1 材料 | 第40页 |
| ·试验动物与试剂 | 第40页 |
| ·试剂 | 第40页 |
| ·仪器 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-43页 |
| ·总RNA制备 | 第40页 |
| ·PepT1cDNA中间片段克隆 | 第40-41页 |
| ·PepT1cDNA 3`和5`片段克隆 | 第41-43页 |
| ·序列拼接 | 第43页 |
| ·PepT1cDNA全长序列分析 | 第43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-50页 |
| ·肝组织总RNA制备效果 | 第43页 |
| ·PepT1cDNA中间片段克隆 | 第43页 |
| ·PepT1cDNA 3`和5`克隆 | 第43-44页 |
| ·序列拼接结果 | 第44-46页 |
| ·PepT1cDNA全长生物信息分析结果 | 第46-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| ·试验步骤和方法讨论 | 第50页 |
| ·PepT1cDNA基因的特性 | 第50-51页 |
| ·PepT1活性 | 第51-52页 |
| 第四章 鲫鱼LAT2和PEPT1基因组织表达丰度 | 第52-61页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| ·试验动物 | 第52页 |
| ·试剂 | 第52页 |
| ·仪器 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-55页 |
| ·总RNA制备 | 第52-53页 |
| ·各组织cDNA链制备 | 第53页 |
| ·各组织的LAT2基因和PepT1基因表达检测 | 第53-55页 |
| 3 结果与分析 | 第55-57页 |
| ·各组织总RNA制备效果 | 第55页 |
| ·各组织LAT2基因和PepT1基因表达检测结果 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-61页 |
| ·荧光定量PCR技术要求 | 第57-58页 |
| ·影响扩增效率的因素分析 | 第58页 |
| ·LAT2基因的组织表达 | 第58-59页 |
| ·PepT1基因的组织表达 | 第59-61页 |
| 结论与创新 | 第61-63页 |
| 1 结论 | 第61-62页 |
| 2 创新之处 | 第62-63页 |
| 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 作者简介 | 第77页 |