| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 引言 | 第9-26页 |
| 第一节 干扰素调节因子7是宿主抗病毒防御反应的关键性调节因子 | 第9-19页 |
| ·干扰素调节因子7的发现 | 第9-10页 |
| ·干扰素调节因子7的结构 | 第10-11页 |
| ·干扰素调节因子7的调控 | 第11-15页 |
| ·干扰素调节因子7的功能 | 第15-19页 |
| 第二节 干扰素调节因子7对人类8型疱疹病毒基因表达的影响 | 第19-25页 |
| ·人类8型疱疹病毒的发现 | 第19-20页 |
| ·人类8型疱疹病毒的感染状态分为潜伏状态和裂解状态 | 第20页 |
| ·人类8型疱疹病毒的感染状态受复制与转录激活蛋白的调控 | 第20-24页 |
| ·干扰素调节因子7对复制与转录激活蛋白的抑制效应 | 第24-25页 |
| 第三节 本文的研究意义 | 第25-26页 |
| 第二章 实验材料与实验方法 | 第26-36页 |
| 第一节 实验材料 | 第26-29页 |
| ·菌株 | 第26页 |
| ·引物 | 第26-27页 |
| ·质粒 | 第27-28页 |
| ·细胞 | 第28页 |
| ·试剂 | 第28-29页 |
| ·软件 | 第29页 |
| 第二节 实验方法 | 第29-36页 |
| ·大肠杆菌超级感受态细胞的制备 | 第29页 |
| ·目的基因的定点突变 | 第29-30页 |
| ·质粒的酶切连接转化 | 第30-31页 |
| ·质粒的制备与纯化 | 第31-32页 |
| ·细胞的培养与转染 | 第32-33页 |
| ·病毒的制备与感染 | 第33-34页 |
| ·荧光素酶活性测定 | 第34页 |
| ·蛋白免疫印迹实验 | 第34-35页 |
| ·细胞固定与荧光照相 | 第35-36页 |
| 第三章 实验结果 | 第36-61页 |
| 第一节 干扰素调节因子7赖氨酸残基的定点突变 | 第36-43页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K50R的构建 | 第37-38页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K61R的构建 | 第38-39页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K92R的构建 | 第39-40页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K120R的构建 | 第40-41页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K303R的构建 | 第41-42页 |
| ·质粒pCMV-IRF7A-K373R的构建 | 第42-43页 |
| 第二节 干扰素调节因子7影响 HHV-8裂解复制的效果 | 第43-48页 |
| ·干扰素调节因子7影响HHV-8感染后的裂解复制的效果 | 第43-46页 |
| ·干扰素调节因子7影响HHV-8建立潜伏后的再激活的效果 | 第46-48页 |
| 第三节 赖氨酸突变影响干扰素调节因子7不同功能的效果 | 第48-61页 |
| ·野生/突变型干扰素调节因子7激活 IFNα1启动子的效果比较 | 第48-50页 |
| ·野生/突变型干扰素调节因子7激活 IFNβ启动子的效果比较 | 第50-52页 |
| ·野生/突变型干扰素调节因子7抑制RTA激活ORF57启动子的效果比较 | 第52-55页 |
| ·野生/突变型干扰素调节因子7影响HHV-8感染后裂解复制的效果比较 | 第55-58页 |
| ·野生/突变型干扰素调节因子7影响潜伏HHV-8再激活的效果比较 | 第58-61页 |
| 第四章 讨论 | 第61-69页 |
| 第一节 干扰素调节因子7对 HHV-8裂解复制的影响 | 第61页 |
| 第二节 赖氨酸突变对干扰素调节因子7不同功能的影响 | 第61-69页 |
| ·赖氨酸突变对干扰素调节因子7激活 IFN功能的影响 | 第63-64页 |
| ·赖氨酸突变对干扰素调节因子7抑制RTA激活ORF57功能的影响 | 第64-65页 |
| ·赖氨酸突变对干扰素调节因子7抑制HHV-8裂解复制功能的影响 | 第65-67页 |
| ·赖氨酸突变影响干扰素调节因子7不同功能的比较 | 第67-69页 |
| 第五章 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 论文致谢 | 第74-75页 |
| 个人简历 | 第75页 |
