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梅山、大白猪FIT1基因真核表达载体的构建及其转染研究

摘要第1-10页
Abstract第10-12页
前言第12-18页
第一部分:梅山猪和大白猪FIT1基因真核表达载体的构建第18-45页
 1. 研究目的第18页
 2. 材料和方法第18-33页
   ·试验材料第18-23页
     ·实验样品第18-19页
     ·主要试剂和试剂盒第19页
     ·常用缓冲液及其配制第19-20页
     ·主要的仪器设备和耗材第20页
     ·主要的生物学网站和生物学分析工具第20-21页
     ·所用到的载体第21-23页
   ·实验方法第23-27页
     ·猪基因组DNA的提取第23-24页
     ·梅山和大白猪FIT1基因全长的获取第24-27页
   ·梅山猪和大白猪FIT1基因真核表达载体的构建第27-33页
     ·荧光蛋白融合超表达载体的构建第27-31页
     ·pcDNA3.1(+)-msFIT1和pcDNA3.1(+)-dbFIT1真核超表达载体的构建第31-32页
     ·phc-Red-N1-dbFIT1表达载体的构建第32-33页
 3. 结果与分析第33-43页
   ·FIT1基因的扩增结果第33-36页
     ·基因组DNA的提取结果第33-34页
     ·从基因组中扩增FIT1全长的结果第34-35页
     ·阳性克隆子的鉴定结果第35-36页
   ·pcDNA3.1-msFIT1-EGFP和pcDNA3.1-dbFIT1荧光融合超表达载体的构建结果第36-40页
     ·提取质粒的双酶切结果第36页
     ·pEGFP-msFIT1和pEGFP-dbFIT1的克隆检测结果第36-37页
     ·pEGFP-dbFIT1a/b和pEGFP-msFIT1a/b双重双酶切的结果第37-38页
     ·载体连接作克隆检测结果第38-39页
     ·pcDNA3.1-msFIT1-EGFP和pcDNA3.1-msFIT1-EGFP质粒酶切结果第39-40页
   ·pcDAN3.1-msFIT1和pcDNA3.1-dbFIT1真核超表达载体的构建结果第40-42页
     ·T-pc-msFIT1、T-pc-dbFIT1和pcDNA3.1(+)质粒提取的结果第40页
     ·质粒酶切结果第40-41页
     ·pcDNA3.1-msFIT1和pcDNA3.1-dbFIT1超表达载体的克隆检测和质粒酶切结果第41-42页
   ·phc-Red-dbFIT1质粒的构建第42-43页
     ·质粒的双酶切结果第42-43页
     ·phc-Red-dbFIT1克隆阳性检测结果第43页
     ·phc-Red-dbFIT1质粒双酶切结果第43页
 4. 小结讨论第43-45页
第二部分:FIT1基因梅山型和大白型真核表达载体对PK-15细胞的转染第45-75页
 1. 研究目的第45-46页
 2. 材料、试剂和方法第46-59页
   ·实验材料及准备第46-47页
     ·玻璃器皿的准备第46页
     ·金属器皿的准备第46页
     ·塑料用品的准备第46-47页
     ·胶塞的处理第47页
     ·细胞培养板、培养瓶、塑料移液管的准备第47页
     ·细胞染色用盖玻片的准备第47页
     ·其它耗材的准备第47页
   ·消毒和灭菌第47-49页
     ·消毒第47-48页
     ·灭菌第48-49页
   ·试验所需试剂的准备第49页
   ·实验方法第49-59页
     ·PK-15细胞培养特性探索第49-50页
     ·两种转染试剂转染效果的比较第50-56页
     ·确定所构建的质粒能否成功表达荧光第56-57页
     ·同一转染体系对不同细胞进行转染时转染效率比较第57-58页
     ·对PK-15细胞的转染及荧光共聚焦观察第58-59页
 3. 结果与分析第59-73页
   ·PK-15细胞常规培养结果第59-60页
   ·两种转染试剂的对比结果第60-67页
   ·各种质粒的转染结果第67-69页
   ·同一转染体系对PK-15细胞和C2C12细胞转染效果的比较第69-71页
   ·荧光共聚焦观察结果第71-73页
 4. 小结讨论第73-75页
第三部分:全文讨论总结第75-85页
 1. 讨论第75-81页
 2. 下一步工作第81-83页
 3. 总结第83-85页
参考文献第85-91页
致谢第91-93页
附录第93-94页

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