| 摘要 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-20页 |
| 1.1 植物叶色突变的研究进展 | 第8-12页 |
| 1.1.1 水稻叶色的研究 | 第8-11页 |
| 1.1.2 玉米叶色突变的研究 | 第11-12页 |
| 1.1.3 拟南芥叶色突变体的研究 | 第12页 |
| 1.2 叶色突变的分子机制 | 第12-17页 |
| 1.2.1 叶绿素生物合成的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2.2 叶绿素生物合成途径的调节 | 第13-16页 |
| 1.2.1.1 谷氨酰-tRNA还原酶(GluTR) | 第13-14页 |
| 1.2.1.2 镁离子螯合酶(MgCh) | 第14-16页 |
| 1.2.1.3 叶绿素酸酯a氧化酶(CAO) | 第16页 |
| 1.2.3 叶绿素降解途径的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3 谷子研究背景 | 第17页 |
| 1.4 图位克隆 | 第17-19页 |
| 1.4.1 图位克隆的原理 | 第17页 |
| 1.4.2 图位克隆的技术方法 | 第17-19页 |
| 1.4.2.1 构建遗传作图群体 | 第17页 |
| 1.4.2.2 筛选与目的基因连锁的分子标记 | 第17-18页 |
| 1.4.2.3 目的基因的定位 | 第18-19页 |
| 1.4.2.4 鉴定目的基因 | 第19页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-28页 |
| 2.1 供试材料及遗传作图群体构建 | 第20页 |
| 2.2 突变体及野生型农艺性状调查 | 第20-21页 |
| 2.3 光合色素含量测定 | 第21-22页 |
| 2.4 叶片光合指标和叶绿素荧光动力学参数测定 | 第22页 |
| 2.5 透射电镜分析 | 第22-23页 |
| 2.6 DNA提取 | 第23页 |
| 2.7 突变基因定位 | 第23-26页 |
| 2.7.1 利用SSR标记和Indel标记进行基因定位 | 第23-25页 |
| 2.7.2 利用SNP标记进行基因定位 | 第25-26页 |
| 2.8 候选基因分析 | 第26页 |
| 2.9 半定量表达测定 | 第26-27页 |
| 2.10 实时RT-PCR分析 | 第27页 |
| 2.11 生物信息学分析 | 第27-28页 |
| 2.12 种子萌发及幼苗生长比较 | 第28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-47页 |
| 3.1 突变体的形态特征及主要农艺性状变异分析 | 第28-30页 |
| 3.2 突变体的光合色素含量 | 第30-32页 |
| 3.3 突变体的叶绿体显微结构观察 | 第32-34页 |
| 3.4 突变体的光合特性研究 | 第34-35页 |
| 3.5 突变体的叶绿素荧光动力学参数 | 第35-36页 |
| 3.6 pgl1突变体的遗传分析 | 第36-37页 |
| 3.7 作图群体父母本间多态性标记的筛选 | 第37页 |
| 3.8 pgl1突变体淡绿色基因初定位 | 第37-38页 |
| 3.9 pgl1突变体淡绿色基因精细定位 | 第38-40页 |
| 3.10 突变候选基因鉴定 | 第40-43页 |
| 3.11 RT-PCR分析 | 第43页 |
| 3.12 实时RT-PCR分析 | 第43-45页 |
| 3.13 突变体和野生型蛋白结构分析 | 第45-46页 |
| 3.14 种子萌发及幼苗生长观察比较 | 第46-47页 |
| 4 全文讨论与结论 | 第47-51页 |
| 4.1 MgCh不同位点突变导致表型上存在差异 | 第47-48页 |
| 4.2 pgl1的光合性能未下降 | 第48-49页 |
| 4.3 pgl1的突变表型是由单碱基突变引起的,突变未发生在蛋白功能域结构上 | 第49页 |
| 4.4 突变体中参与叶绿素合成机制,调控叶绿素的合成速率相关基因的表达 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| Abstract | 第57页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 作者简历 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
