摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
第1章 绪论 | 第18-32页 |
1.1 无机物的原位沉积 | 第18-20页 |
1.1.1 原位沉积无机物的方法 | 第18-19页 |
1.1.2 硅氧化物的原位沉积及其应用 | 第19页 |
1.1.3 银纳米颗粒的原位沉积及其应用 | 第19-20页 |
1.2 有机大分子仿生诱导无机物的原位沉积 | 第20-23页 |
1.2.1 生物大分子诱导无机物原位沉积的特点 | 第20-21页 |
1.2.2 有机大分子诱导硅氧化物原位沉积的研究现状 | 第21-23页 |
1.2.3 纤维素诱导金属纳米颗粒原位沉积的研究现状 | 第23页 |
1.3 酶固定化 | 第23-28页 |
1.3.1 固定化酶的特点和意义 | 第23-24页 |
1.3.2 酶固定化的方法 | 第24-26页 |
1.3.3 酶固定化策略的选择 | 第26-28页 |
1.4 本论文的立题意义和研究内容 | 第28-32页 |
1.4.1 本论文的研究目的和意义 | 第28-29页 |
1.4.2 本论文的研究内容和相互关系 | 第29-30页 |
1.4.3 本论文的创新点 | 第30-32页 |
第2章 聚苯乙烯孔板表面沉积硅氧化物及其酶固定化 | 第32-54页 |
2.1 实验部分 | 第32-41页 |
2.1.1 实验材料 | 第32-33页 |
2.1.2 异溴丁酸羟乙酯接枝PAA的制备 | 第33-34页 |
2.1.3 聚苯乙烯孔板表面硅氧化物的修饰 | 第34-36页 |
2.1.4 硅氧化物修饰聚苯乙烯孔板表面的化学组成 | 第36页 |
2.1.5 硅氧化物修饰聚苯乙烯孔板表面的蛋白固定 | 第36-38页 |
2.1.6 固定化酶性能的表征 | 第38-40页 |
2.1.7 PDMAEMA在硅氧化物修饰中作用 | 第40-41页 |
2.1.8 固定化蛋白在硅氧化物中的分布 | 第41页 |
2.2 结果与讨论 | 第41-52页 |
2.2.1 PAA-Br的核磁共振吸收谱 | 第41-43页 |
2.2.2 PDMAEMA对硅氧化物原位沉积的作用 | 第43-45页 |
2.2.3 硅氧化物修饰的聚苯乙烯表面的形貌结构与化学组成 | 第45-48页 |
2.2.4 聚苯乙烯孔板表面硅氧化物修饰与酶固定 | 第48-50页 |
2.2.5 硅氧化物与酶的相互作用 | 第50-52页 |
2.3 本章小结 | 第52-54页 |
第3章 原位沉积的硅氧化物亲水化改性聚苯乙烯微流控管道及其生物样本检测 | 第54-68页 |
3.1 实验部分 | 第54-60页 |
3.1.1 实验材料 | 第54-55页 |
3.1.2 微流控管道的设计和加工 | 第55页 |
3.1.3 微流控管道内壁修饰PDMAEMA | 第55-56页 |
3.1.4 聚苯乙烯芯片中的自动进样 | 第56页 |
3.1.5 微流控管道内壁的酶固定 | 第56-57页 |
3.1.6 智能手机读出 | 第57-58页 |
3.1.7 微流控管道内壁的固定化酶活力的表征 | 第58-59页 |
3.1.8 微流控管道内壁的固定化酶形貌的表征 | 第59页 |
3.1.9 硅氧化物沉积的聚苯乙烯表面的亲疏水性 | 第59页 |
3.1.10 葡萄糖和胆固醇的检测及标准曲线的建立 | 第59-60页 |
3.2 结果与讨论 | 第60-67页 |
3.2.1 聚苯乙烯芯片的设计 | 第60-62页 |
3.2.2 芯片管道内固定化酶的微观形貌 | 第62页 |
3.2.3 芯片管道内极性介质样品的自动进样 | 第62-64页 |
3.2.4 聚苯乙烯芯片反应区读出方法 | 第64-65页 |
3.2.5 聚苯乙烯芯片反应区固定化酶的稳定性 | 第65-66页 |
3.2.6 单样本双指标的检测 | 第66-67页 |
3.3 本章小结 | 第67-68页 |
第4章 硅氧化物修饰的聚苯乙烯超细纤维及漆酶的固定化 | 第68-86页 |
4.1 实验部分 | 第68-75页 |
4.1.1 实验材料 | 第68-69页 |
4.1.2 静电纺丝制备聚苯乙烯超细纤维 | 第69页 |
4.1.3 聚苯乙烯超细纤维表面修饰PDMAEMA | 第69-70页 |
4.1.4 聚苯乙烯超细纤维上漆酶的固定 | 第70-71页 |
4.1.5 固定化漆酶的形貌表征和元素分析 | 第71页 |
4.1.6 漆酶的活力表征 | 第71-72页 |
4.1.7 漆酶在纺丝纤维表面的固定化效率 | 第72页 |
4.1.8 漆酶的稳定性 | 第72-73页 |
4.1.9 失活漆酶的复性行为 | 第73-74页 |
4.1.10 漆酶在废水脱色的应用 | 第74-75页 |
4.2 结果与讨论 | 第75-84页 |
4.2.1 静电纺丝制备聚苯乙烯超细纤维 | 第75-76页 |
4.2.2 固定化漆酶的形貌表征 | 第76-77页 |
4.2.3 漆酶在纺丝纤维表面的固定化效率 | 第77-79页 |
4.2.4 固定化漆酶的稳定性 | 第79-81页 |
4.2.5 固定化漆酶的酶复性 | 第81-82页 |
4.2.6 固定化漆酶在废水脱色的应用 | 第82-84页 |
4.3 本章小结 | 第84-86页 |
第5章 硅氧化物修饰的棉纱纤维及糖化酶的固定化 | 第86-103页 |
5.1 实验部分 | 第86-92页 |
5.1.1 实验材料 | 第86-87页 |
5.1.2 棉纱纤维表面引发生长PDMAEMA | 第87页 |
5.1.3 棉纱纤维上糖化酶的固定 | 第87-88页 |
5.1.4 固定化糖化酶的形貌表征 | 第88页 |
5.1.5 罗氏血糖仪表征糖化酶活力 | 第88-89页 |
5.1.6 糖化酶在棉纱纤维表面的固定方法的优化 | 第89-90页 |
5.1.7 储存温度对固定化糖化酶活力的影响 | 第90页 |
5.1.8 失活糖化酶的复性行为 | 第90-91页 |
5.1.9 固定化糖化酶反应条件的优化 | 第91-92页 |
5.1.10 固定化糖化酶的重复使用性能 | 第92页 |
5.2 结果与讨论 | 第92-101页 |
5.2.1 罗氏血糖仪用于测量淀粉溶液中的糖化酶浓度的检测 | 第92-93页 |
5.2.2 棉纱纤维的干燥方式对糖化酶的固定的影响 | 第93-94页 |
5.2.3 糖化酶固定化的过程 | 第94-97页 |
5.2.4 固定了糖化酶的棉纱纤维的形貌 | 第97-98页 |
5.2.5 固定化糖化酶的反应条件 | 第98-99页 |
5.2.6 固定化糖化酶的储存稳定性 | 第99-100页 |
5.2.7 固定化糖化酶的复性行为 | 第100-101页 |
5.3 本章小结 | 第101-103页 |
第6章 AgNPs在NCC表面的原位沉积 | 第103-123页 |
6.1 实验部分 | 第103-110页 |
6.1.1 实验材料 | 第103-104页 |
6.1.2 硫酸水解法制备NCC | 第104页 |
6.1.3 银氨溶液的配置 | 第104-105页 |
6.1.4 NCC辅助生成AgNPs的条件优化 | 第105-106页 |
6.1.5 NCC对常温下制备AgNPs浓度的影响 | 第106页 |
6.1.6 葡萄糖检测反应的条件优化 | 第106-107页 |
6.1.7 葡萄糖检测 | 第107-108页 |
6.1.8 血清样本中葡萄糖的浓度测试 | 第108页 |
6.1.9 细胞培养过程中培养基中葡萄糖的浓度监测 | 第108页 |
6.1.10 NCC/AgNPs复合材料的抗菌效应 | 第108-109页 |
6.1.11 NCC辅助生成的AgNPs的形貌表征 | 第109页 |
6.1.12 NCC辅助生成的AgNPs的紫外-可见光光谱和吸光度 | 第109页 |
6.1.13 NCC的颗粒浓度与尺寸表征 | 第109-110页 |
6.1.14 NCC的热失重分析 | 第110页 |
6.1.15 NCC的晶体结构分析 | 第110页 |
6.1.16 原子力显微镜分析NCC的形貌 | 第110页 |
6.2 结果与讨论 | 第110-122页 |
6.2.1 NCC形貌与物理化学性质的表征 | 第110-113页 |
6.2.2 NCC辅助生成AgNPs条件的优化 | 第113-115页 |
6.2.3 NCC对常温下AgNPs生成的影响 | 第115页 |
6.2.4 NCC辅助AgNPs生成的机制探讨 | 第115-117页 |
6.2.5 NCC辅助AgNPs生成反应用于葡萄糖检测 | 第117-121页 |
6.2.6 NCC/AgNPs的抗菌性能 | 第121-122页 |
6.3 本章小结 | 第122-123页 |
全文结论 | 第123-125页 |
致谢 | 第125-127页 |
参考文献 | 第127-139页 |
附录 | 第139-141页 |
攻读博士学位期间发表的论文及科研成果 | 第141-142页 |