| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 主要缩写词 | 第9-11页 |
| 1 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 血管修剪 | 第11-13页 |
| 1.1.1 血管修剪和血管退化的概念 | 第11-12页 |
| 1.1.2 静脉血管修剪和动脉血管修剪的方式 | 第12-13页 |
| 1.1.3 血管修剪的细胞行为 | 第13页 |
| 1.2 血流动力学在血管修剪中的作用和分子机制 | 第13-15页 |
| 1.3 Klf转录因子家族 | 第15-17页 |
| 1.3.1 Klf2/4在血管发育中的作用 | 第15-16页 |
| 1.3.2 Klf6的功能 | 第16-17页 |
| 1.4 斑马鱼作为研究对象的优势 | 第17-18页 |
| 1.5 本论文的研究目的和主要内容 | 第18-21页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第18页 |
| 1.5.2 主要内容 | 第18-21页 |
| 2 斑马鱼尾部血管的修剪过程 | 第21-33页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器设备 | 第21-23页 |
| 2.2.2 斑马鱼的饲养与繁殖 | 第23-25页 |
| 2.2.3 激光共聚焦成像 | 第25-26页 |
| 2.2.4 斑马鱼整胚免疫荧光 | 第26-27页 |
| 2.2.5 统计分析 | 第27页 |
| 2.3 实验结果 | 第27-30页 |
| 2.3.1 斑马鱼尾部血管网络的发育过程 | 第27-29页 |
| 2.3.2 斑马鱼尾部血管修剪过程的阶段划分 | 第29-30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 3 血流动力学因素调控斑马鱼尾静脉的形成 | 第33-39页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 实验器材与材料 | 第33-34页 |
| 3.2.2 Time-lapse慢速拍摄 | 第34页 |
| 3.2.3 药物处理 | 第34页 |
| 3.2.4 统计分析 | 第34-35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-37页 |
| 3.3.1 血流动力学因素影响斑马鱼尾部血管的修剪 | 第35-36页 |
| 3.3.2 血流动力学因素调控尾静脉的形成 | 第36-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37页 |
| 3.5 本章小结 | 第37-39页 |
| 4 klf6a作为力学感受器调控斑马鱼尾静脉的形成 | 第39-69页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第39-60页 |
| 4.2.1 实验仪器和材料 | 第39-42页 |
| 4.2.2 细胞力学加载 | 第42-43页 |
| 4.2.3 RNA的提取 | 第43-44页 |
| 4.2.4 荧光定量PCR | 第44-47页 |
| 4.2.5 整胚原位杂交 | 第47-51页 |
| 4.2.6 蛋白免疫印迹 | 第51-53页 |
| 4.2.7 Morpholino准备与使用 | 第53-55页 |
| 4.2.8 CRISPR/Cas9基因编辑技术构建斑马鱼klf6a突变体 | 第55-60页 |
| 4.2.9 统计分析 | 第60页 |
| 4.3 实验结果 | 第60-67页 |
| 4.3.1 力学感受器筛选与验证 | 第60-63页 |
| 4.3.2 klf6a的敲降影响斑马鱼尾静脉的形成 | 第63-65页 |
| 4.3.3 klf6a的敲除影响斑马鱼尾静脉的形成 | 第65-67页 |
| 4.4 讨论 | 第67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 5 总结与展望 | 第69-71页 |
| 5.1 主要结论 | 第69-70页 |
| 5.2 后续工作建议 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 附录 | 第81页 |
