| 中文摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略词中英注释表 | 第12-14页 |
| 绪论 | 第14-26页 |
| 第一部分 黄芪甲苷通过促进自噬改善脑缺血后细胞凋亡 | 第26-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第27页 |
| 1.2 实验方法 | 第27-33页 |
| 1.2.1 大鼠缺血再灌注模型建立 | 第27-28页 |
| 1.2.2 TTC 染色测脑梗死体积 | 第28-29页 |
| 1.2.3 神经功能缺失体征评分 | 第29页 |
| 1.2.4 取材与固定 | 第29页 |
| 1.2.5 HE 染色及 TUNEL 染色 | 第29-31页 |
| 1.2.6 透射电子显微镜检测自噬小体 | 第31-32页 |
| 1.2.7 统计学分析 | 第32-33页 |
| 1.3 实验结果 | 第33-39页 |
| 1.3.1 黄芪甲苷可降低神经损伤评分 | 第33页 |
| 1.3.2 黄芪甲苷可减小缺血再灌注损伤后脑梗死面积 | 第33-36页 |
| 1.3.3 黄芪甲苷可减少脑缺血再灌注造成的神经细胞坏死及凋亡 | 第36页 |
| 1.3.4 黄芪甲苷改善缺血再灌注诱导的脑凋亡 | 第36-38页 |
| 1.3.5 黄芪甲苷促进脑缺血的自噬 | 第38-39页 |
| 1.4 讨论 | 第39-42页 |
| 第二部分 黄芪甲苷通过AKT-mTOR信号通路促进脑缺血的自噬 | 第42-58页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第42-44页 |
| 2.1.2 主要仪器及耗材 | 第44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.2.1 组织蛋白质的提取 | 第44页 |
| 2.2.2 Western blot | 第44-46页 |
| 2.2.3 统计学分析 | 第46-47页 |
| 2.3 实验结果 | 第47-55页 |
| 2.3.1 黄芪甲苷对脑缺血再灌注大鼠脑海马体组织凋亡相关蛋白表达的影响（n=6） | 第47-49页 |
| 2.3.2 黄芪甲苷对脑缺血再灌注大鼠脑海马体组织自噬相关蛋白表达的影响（n=6） | 第49-51页 |
| 2.3.3 黄芪甲苷对脑缺血再灌注大鼠脑海马体组织AKT信号通路的影响（n=6） | 第51-53页 |
| 2.3.4 黄芪甲苷对脑缺血再灌注大鼠脑海马体组织m TOR信号通路的影响（n=6） | 第53-55页 |
| 2.4 讨论 | 第55-58页 |
| 全文总结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第71-72页 |
