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硝基苯乙烯类、含氮杂环类以及苯腙类化合物抑制稻瘟菌的生物活性研究

摘要第5-6页
ABSTRACT第6页
第一章 绪论第10-25页
    1.1 水稻稻瘟病介绍和稻瘟菌杀菌剂第10-11页
    1.2 线粒体呼吸抑制剂(MRJs)第11-12页
    1.3 黑色素生物合成抑制剂(MBIs)第12-17页
        1.3.1 三羟基萘酚还原酶(3HNR)及其抑制剂第13-15页
        1.3.2 小柱孢酮脱水酶(SDase)及其抑制剂第15-17页
    1.4 甾醇14α-去甲基化酶(CYP51)及其抑制剂第17-23页
        1.4.1 CYP51的结构和性质第19-21页
        1.4.2 CYP51的抑制剂第21-23页
    1.5 本文的立体依据及目标第23-25页
第二章 利什曼原虫CYP51的表达纯化第25-34页
    2.1 引言第25-26页
    2.2 实验材料第26-29页
        2.2.1 主要仪器第26-27页
        2.2.2 主要试剂第27-28页
        2.2.3 主要溶液的配置第28-29页
    2.3 实验方法第29-32页
        2.3.1 利什曼原虫CYP51的表达和纯化第29-31页
        2.3.2 纯化所得利什曼原虫CYP51的脱盐第31页
        2.3.3 纯化蛋白SDS-PAGE分析检测第31-32页
    2.4 结果与讨论第32-33页
    2.5 本章小结第33-34页
第三章 利什曼原虫CYP51与CO和化合物相作用的光谱性质实验第34-47页
    3.1 实验原理第34-35页
    3.2 实验材料第35-37页
        3.2.1 主要仪器第35-36页
        3.2.2 主要试剂第36页
        3.2.3 主要溶液的配置第36-37页
    3.3 实验方法第37-38页
        3.3.1 利什曼原虫CYP51光谱性质以及蛋白含量的测定第37页
        3.3.2 化合物与利什曼原虫CYP51结合光谱的测定第37-38页
    3.4 结果与讨论第38-45页
        3.4.1 利什曼原虫CYP51光谱性质以及蛋白含量的测定第38-39页
        3.4.2 化合物与利什曼原虫CYP51结合光谱的测定第39-45页
    3.5 本章小结第45-47页
第四章 以稻瘟菌3HNR为靶标的抑制剂筛选实验第47-64页
    4.1 引言第47页
    4.2 实验原理第47-48页
    4.3 实验材料第48-50页
        4.3.1 主要仪器第48-49页
        4.3.2 主要试剂第49页
        4.3.3 主要溶液的配置第49-50页
    4.4 实验方法第50-52页
        4.4.1 稻瘟菌3HNR的表达、纯化第50-51页
        4.4.2 稻瘟菌3HNR的蛋白浓度的测定第51页
        4.4.3 hs系列化合物、CS系列化合物以及X系列化合物的初筛第51-52页
        4.4.4 对稻瘟菌3HNR的IC_(50)的测定第52页
    4.5 结果与讨论第52-63页
        4.5.1 BSA标准曲线法测定蛋白含量结果第52-53页
        4.5.2 抑制剂的初筛结果第53-55页
        4.5.3 化合物对稻瘟菌3HNR的IC_(50)测试结果第55-63页
    4.6 本章小结第63-64页
第五章 稻瘟菌活体水平上抑制剂的筛选第64-76页
    5.1 引言第64页
    5.2 实验材料第64-65页
        5.2.1 主要仪器第64页
        5.2.2 主要试剂第64页
        5.2.3 主要溶液的配置第64-65页
    5.3 实验方法第65-66页
        5.3.1 初筛具体步骤第65-66页
        5.3.2 高活性化合物的EC_(50)值的测定第66页
    5.4 结果与讨论第66-75页
        5.4.1 化合物初筛实验结果第66-70页
        5.4.2 部分化合物EC_(50)的测定第70-75页
    5.5 本章小结第75-76页
第六章 全文总结与展望第76-78页
在校期间发表的论文、科研成果等第78-79页
参考文献第79-85页
致谢第85页

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