| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第17-31页 |
| 1.1 引言 | 第17-28页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第17-18页 |
| 1.1.2 国内外研究进展 | 第18-28页 |
| 1.2 研究目标和主要研究内容 | 第28-29页 |
| 1.2.1 研究目标 | 第28页 |
| 1.2.2 主要研究内容 | 第28-29页 |
| 1.3 研究技术路线 | 第29-30页 |
| 1.4 项目来源与经费支持 | 第30-31页 |
| 第二章 美国白蛾几丁质酶基因HcChi的RNA干扰研究 | 第31-54页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-40页 |
| 2.2.1 实验材料及主要试剂 | 第32-33页 |
| 2.2.2 研究方法 | 第33-40页 |
| 2.3 结果与分析 | 第40-51页 |
| 2.3.1 美国白蛾四、五龄幼虫几丁质酶HcChi基因时间表达谱 | 第40-41页 |
| 2.3.2 利用RNA干扰注射法沉默美国白蛾几丁质酶基因的研究 | 第41-47页 |
| 2.3.3 HcChi基因细菌表达的RNA干扰载体构建及其介导的RNA干扰 | 第47-51页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第51-54页 |
| 第三章 美国白蛾两个乙酰胆碱酯酶基因HcAce的克隆、生物信息学分析及RNA干扰研究 | 第54-76页 |
| 3.1 引言 | 第54-55页 |
| 3.2 材料与方法 | 第55-62页 |
| 3.2.1 实验材料及主要试剂 | 第55页 |
| 3.2.2 研究方法 | 第55-62页 |
| 3.3 结果与分析 | 第62-74页 |
| 3.3.1 美国白蛾乙酰胆碱酯酶基因HcAce1和HcAce2的克隆及生物信息学分析 | 第62-69页 |
| 3.3.2 dsHcAce1和dsHcAce2的体外合成和利用注射法的RNA干扰效应研究 | 第69-73页 |
| 3.3.3 dsHcAce1和dsHcAce2细菌表达的RNA干扰载体构建 | 第73-74页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第74-76页 |
| 第四章 美国白蛾HcSID-1基因的克隆、表达模式分析和功能验证 | 第76-91页 |
| 4.1 引言 | 第76-77页 |
| 4.2 材料与方法 | 第77-83页 |
| 4.2.1 实验材料及主要试剂 | 第77页 |
| 4.2.2 研究方法 | 第77-83页 |
| 4.3 结果与分析 | 第83-88页 |
| 4.3.1 美国白蛾HcSID-1基因的克隆及生物信息学分析 | 第83-86页 |
| 4.3.2 美国白蛾HcSID-1基因的时空表达模式 | 第86-87页 |
| 4.3.3 利用RNA干扰技术验证美国白蛾HcSID-1的基因功能 | 第87-88页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第88-91页 |
| 第五章 RNA干扰处理的美国白蛾幼虫转录组分析 | 第91-116页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 材料与方法 | 第92-95页 |
| 5.2.1 实验材料及主要试剂 | 第92页 |
| 5.2.2 研究方法 | 第92-95页 |
| 5.3 结果与分析 | 第95-114页 |
| 5.3.1 美国白蛾转录组测序质量评价与组装结果 | 第95-97页 |
| 5.3.2 转录组Unigene的功能注释 | 第97-98页 |
| 5.3.3 基因差异分析 | 第98-106页 |
| 5.3.4 关键基因分析 | 第106-114页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第114-116页 |
| 第六章 结论与展望 | 第116-119页 |
| 6.1 主要结论 | 第116-117页 |
| 6.2 主要创新点 | 第117-118页 |
| 6.3 展望 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-137页 |
| 在读期间的学术研究 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
