| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第14-29页 |
| 1.1 叶色突变体的研究进展 | 第14-22页 |
| 1.1.1 叶色突变体的类型及来源 | 第14-15页 |
| 1.1.2 叶色突变体的遗传机理 | 第15页 |
| 1.1.3 叶色突变体形成的分子机制 | 第15-19页 |
| 1.1.4 水稻叶色突变体基因的克隆 | 第19-21页 |
| 1.1.5 叶色突变体的研究意义 | 第21-22页 |
| 1.2 类病斑突变体的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.2.1 类病斑突变体的类型 | 第22-23页 |
| 1.2.2 类病斑产生的发生途径 | 第23页 |
| 1.2.3 水稻类病斑突变体基因的研究 | 第23-24页 |
| 1.2.4 类病斑突变体的应用 | 第24页 |
| 1.3 水稻根长和逆境胁迫相关基因OsCATB研究进展 | 第24-28页 |
| 1.3.1 根长相关基因的研究 | 第24-27页 |
| 1.3.2 水稻根长相关基因—OsCATB的选题依据 | 第27-28页 |
| 1.4 本文研究的目的和意义 | 第28-29页 |
| 1.4.1 白斑叶突变体的研究意义 | 第28页 |
| 1.4.2 水稻根长和逆境胁迫相关基因OsCATB研究意义 | 第28-29页 |
| 第二章 水稻白斑叶突变体 wlml1 的定位与克隆 | 第29-53页 |
| 2.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.1.1 供试材料来源 | 第29页 |
| 2.1.2 群体的构建 | 第29页 |
| 2.2 常用的实验试剂和器材 | 第29-30页 |
| 2.2.1 常用的实验试剂 | 第29页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-41页 |
| 2.3.1 农艺性状的调查 | 第30页 |
| 2.3.2 突变体wlml1的遗传分析 | 第30页 |
| 2.3.3 光合速率的测定 | 第30页 |
| 2.3.4 叶绿素含量的测定 | 第30页 |
| 2.3.5 DNA提取、总RNA提取、RNA反转 | 第30页 |
| 2.3.6 叶片石蜡切片观察 | 第30-31页 |
| 2.3.7 叶片的透射电镜观察 | 第31-32页 |
| 2.3.8 琼脂糖凝胶电泳 | 第32页 |
| 2.3.9 温度处理 | 第32页 |
| 2.3.10 实时定量PCR | 第32-33页 |
| 2.3.11 基因定位及克隆 | 第33页 |
| 2.3.12 实验相关载体的构建 | 第33-38页 |
| 2.3.13 原生质体制备及转化 | 第38页 |
| 2.3.14 农杆菌感受态的制备 | 第38-39页 |
| 2.3.15 大肠杆菌和农杆菌转化 | 第39页 |
| 2.3.16 水稻转基因 | 第39-41页 |
| 2.4 结果与分析 | 第41-51页 |
| 2.4.1 突变体wlml1的表型及农艺性状分析 | 第41-42页 |
| 2.4.2 突变体wlml1和野生型TN1的光合速率、色素含量测定以及细胞结构和叶绿体超微结构的观察 | 第42-44页 |
| 2.4.3 温度处理对野生型和突变体材料的叶绿体色素含量及相关基因表达的影响 | 第44-47页 |
| 2.4.4 突变体wlml1的遗传分析和精细定位 | 第47-48页 |
| 2.4.5 候选基因分析 | 第48-49页 |
| 2.4.6 相关基因相对表达量分析 | 第49-51页 |
| 2.5 结果讨论 | 第51-53页 |
| 第三章 水稻根长和逆境胁迫相关基因OsCATB的功能研究 | 第53-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第53页 |
| 3.2 常用的实验试剂与器材 | 第53页 |
| 3.2.1 常用的实验试剂 | 第53页 |
| 3.2.2 常用的实验器材 | 第53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.3.1 DNA提取、总RNA提取、RNA反转 | 第53页 |
| 3.3.2 实时定量PCR | 第53页 |
| 3.3.3 CRISPR/CAS9敲除载体的构建方法 | 第53页 |
| 3.3.4 农杆菌感受态的制备 | 第53页 |
| 3.3.5 大肠杆菌和农杆菌转化 | 第53-54页 |
| 3.3.6 水稻转基因 | 第54页 |
| 3.3.7 H_2O_2含量的测定 | 第54页 |
| 3.3.8 CAT酶活的测定 | 第54页 |
| 3.3.9 ABA含量的测定 | 第54页 |
| 3.3.10 氮素处理水稻幼苗 | 第54-55页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第55-58页 |
| 3.4.1 水稻OsCATB敲除突变体的获得及表型分析 | 第55页 |
| 3.4.2 水稻OsCATB敲除突变体和野生型正常条件下的生理生化以及分子变化 | 第55-57页 |
| 3.4.3 氮素浓度和形态影响水稻OsCATB敲除突变体根长 | 第57页 |
| 3.4.4 不同形态的氮素处理下CAT家族基因在野生型和oscatb突变体根系中的表达 | 第57-58页 |
| 3.5 结果讨论 | 第58-59页 |
| 第四章 全文结论 | 第59-60页 |
| 4.1 水稻白斑叶突变体wlml1的遗传分析与定位的结论 | 第59页 |
| 4.2 水稻根长和逆境胁迫相关基因OsCATB的功能研究的结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 附录 | 第70-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78页 |
