| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第16-26页 |
| 1.1 我国畜禽遗传资源现状 | 第16页 |
| 1.2 肺部疾病研究与治疗 | 第16-18页 |
| 1.2.1 肺脏的结构与功能 | 第16-17页 |
| 1.2.2 干细胞数量 | 第17页 |
| 1.2.3 常见的呼吸系统疾病 | 第17页 |
| 1.2.4 肺病的治疗 | 第17-18页 |
| 1.3 间充质干细胞相关研究 | 第18-21页 |
| 1.3.1 间充质干细胞的获取和表面抗原的表达 | 第18页 |
| 1.3.2 间充质干细胞的形态和增殖特性 | 第18页 |
| 1.3.3 间充质干细胞的免疫调节特性 | 第18-19页 |
| 1.3.4 间充质干细胞的多分化潜能特点 | 第19-20页 |
| 1.3.5 间充质干细胞修复肺损伤的作用机制 | 第20-21页 |
| 1.3.6 间充质干细胞移植的时效性 | 第21页 |
| 1.4 CRISPR/Cas9系统调控细胞的分化 | 第21-24页 |
| 1.4.1 CRISPR/Cas9技术简介 | 第21-22页 |
| 1.4.2 CRISPR/Cas9介导的转录激活 | 第22-23页 |
| 1.4.3 CRISPR/Cas9调控内源基因的激活表达 | 第23-24页 |
| 1.5 肺泡Ⅱ型上皮细胞研究概况 | 第24-25页 |
| 1.5.1 肺泡Ⅱ型上皮细胞的功能 | 第24页 |
| 1.5.2 肺泡Ⅱ型上皮细胞的诱导 | 第24页 |
| 1.5.3 肺泡Ⅱ型上皮细胞参与肺损伤的修复 | 第24-25页 |
| 1.6 研究目的及意义 | 第25-26页 |
| 第二章 猪肺间充质干细胞的多分化潜能研究 | 第26-43页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第29-35页 |
| 2.2 结果与分析 | 第35-41页 |
| 2.2.1 PMSCs的培养 | 第35页 |
| 2.2.2 PMSCs的冻存情况 | 第35-36页 |
| 2.2.3 PMSCs的生物学特性评估 | 第36-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-43页 |
| 第三章 羊肺间充质干细胞的多分化潜能研究 | 第43-56页 |
| 3.1 材料与方法 | 第43-47页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第43页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第43-47页 |
| 3.2 结果与分析 | 第47-54页 |
| 3.2.1 PMSCs的继代培养 | 第47页 |
| 3.2.2 PMSCs的生物学特性评估 | 第47-54页 |
| 3.3 讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 鹅肺间充质干细胞的多分化潜能研究 | 第56-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第56-58页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第56页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.2 结果与分析 | 第58-65页 |
| 4.2.1 PMSCs的培养 | 第58-60页 |
| 4.2.2 PMSCs的生物学特性评估 | 第60-65页 |
| 4.3 讨论 | 第65-67页 |
| 第五章 羊软骨干细胞的多分化潜能研究 | 第67-77页 |
| 5.1 材料与方法 | 第67-69页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第67页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第67-69页 |
| 5.2 结果与分析 | 第69-75页 |
| 5.2.1 CSPCs的培养 | 第69页 |
| 5.2.2 CSPCs的生物学特性评估 | 第69-75页 |
| 5.3 讨论 | 第75-77页 |
| 第六章 猪肺间充质干细胞向肺泡Ⅱ型上皮细胞诱导分化研究 | 第77-104页 |
| 6.1 实验仪器与材料 | 第77-79页 |
| 6.1.1 动物材料 | 第77页 |
| 6.1.2 实验仪器 | 第77页 |
| 6.1.3 实验试剂 | 第77-79页 |
| 6.2 实验方法 | 第79-90页 |
| 6.2.1 实验分组 | 第79-80页 |
| 6.2.2 SAGM诱导液诱导PMSCs分化 | 第80页 |
| 6.2.3 PneumaCult?-ALIMedium诱导液诱导PMSCs分化 | 第80页 |
| 6.2.4 CRISPR/Cas9介导的基因激活系统诱导PMSCs分化 | 第80-89页 |
| 6.2.5 数据分析 | 第89-90页 |
| 6.3 结果与分析 | 第90-102页 |
| 6.3.1 SAGM诱导液诱导PMSCs向ATⅡ分化 | 第90-91页 |
| 6.3.2 PneumaCult?-ALIMedium诱导液诱导PMSCs向ATⅡ分化 | 第91-93页 |
| 6.3.3 CRISPR/Cas9介导的基因激活系统诱导PMSCs向ATⅡ分化 | 第93-100页 |
| 6.3.4 不同方法诱导PMSCs向ATⅡ分化的比较 | 第100-102页 |
| 6.4 讨论 | 第102-104页 |
| 第七章 猪肺间充质干细胞与诱导的肺泡Ⅱ型上皮细胞移植修复肺损伤研究 | 第104-113页 |
| 7.1 材料与方法 | 第104-107页 |
| 7.1.1 实验材料与试剂 | 第104-105页 |
| 7.1.2 实验方法 | 第105-107页 |
| 7.2 结果与分析 | 第107-111页 |
| 7.2.1 小鼠肺损伤模型的建立 | 第107-108页 |
| 7.2.2 移植细胞的体内示踪观察 | 第108页 |
| 7.2.3 移植的细胞在肺内的分化检测 | 第108-109页 |
| 7.2.4 小鼠体重检测 | 第109-110页 |
| 7.2.5 小鼠存活率检测 | 第110页 |
| 7.2.6 肺组织羟脯氨酸含量测定 | 第110-111页 |
| 7.2.7 肺组织损伤评分 | 第111页 |
| 7.3 讨论 | 第111-113页 |
| 第八章 全文结论 | 第113-114页 |
| 8.1 畜禽PMSCS和CSPCS的多分化潜能研究 | 第113页 |
| 8.2 猪PMSCS向ATⅡ诱导分化研究 | 第113页 |
| 8.3 猪PMSCS与ATⅡ移植修复肺损伤研究 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
| 作者简历 | 第129-130页 |
