| 摘要 | 第4-6页 |
| SUMMARY | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第9-17页 |
| 文献综述 | 第17-39页 |
| 第一章 血小板源性生长因子及其受体 | 第17-29页 |
| 1 PDGF家族及其相互关系 | 第17-20页 |
| 2 激活PDGFRs的模式 | 第20-23页 |
| 2.1 PDGF介导模式 | 第20页 |
| 2.2 不依赖PDGF激活模式 | 第20-21页 |
| 2.3 基因损伤激活模式 | 第21-23页 |
| 3 激活PDGFRs的结果 | 第23-27页 |
| 3.1 PDGF介导模式 | 第23-24页 |
| 3.2 不依赖PDGF的激活模式 | 第24-27页 |
| 3.3 基因损伤 | 第27页 |
| 4 治疗策略 | 第27-28页 |
| 5 小结 | 第28-29页 |
| 第二章 PDGFS家族与缺氧及神经系统相关性研究进展 | 第29-39页 |
| 1 缺氧诱导肝细胞分泌血小板源性生长因子 | 第29-30页 |
| 2 血红蛋白浓度相关EPAS1基因揭示了牦牛低氧适应性的机理 | 第30-31页 |
| 3 PDGFs对神经系统的影响 | 第31-35页 |
| 3.1 神经元 | 第32-33页 |
| 3.2 星形胶质细胞 | 第33页 |
| 3.3 小胶质细胞 | 第33-34页 |
| 3.4 少突胶质细胞 | 第34页 |
| 3.5 脊髓 | 第34-35页 |
| 3.6 血脑屏障 | 第35页 |
| 3.7 PDGF及其受体在中枢神经系统发育中的作用 | 第35页 |
| 4 牦牛的特点及高原低氧环境适应性 | 第35-37页 |
| 4.1 牦牛海拔分布范围 | 第36页 |
| 4.2 牦牛对温度的适应范围 | 第36-37页 |
| 4.3 牦牛的生理特点 | 第37页 |
| 4.4 牦牛的分类 | 第37页 |
| 5 小结 | 第37-39页 |
| 实验研究 | 第39-84页 |
| 第三章 牦牛PDGFA、PDGFR-A基因克隆及分子结构分析 | 第39-49页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 材料 | 第40页 |
| 1.2 方法 | 第40-41页 |
| 1.2.1 引物的设计与合成 | 第40页 |
| 1.2.2 mRNA提取和cDNA合成 | 第40-41页 |
| 1.2.3 牦牛PDGFA和PDGFR-A基因的cDNA克隆 | 第41页 |
| 1.2.4 牦牛PDGFA和PDGFR-A基因特征分析 | 第41页 |
| 2 结果 | 第41-46页 |
| 2.1 牦牛PDGFA和PDGFR-A基因的cDNA克隆 | 第41-42页 |
| 2.2 牦牛PDGFA和PDGFR-A基因序列分析 | 第42-43页 |
| 2.3 牦牛PDGFA和PDGFR-A基因的分析和同源性进化 | 第43-45页 |
| 2.4 亚细胞定位预测 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 PDGFA、PDGFR-A在牦牛主要器官的表达与定位 | 第49-59页 |
| 1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 1.1 材料 | 第50页 |
| 1.2 方法 | 第50-52页 |
| 1.2.1 引物的设计与合成 | 第50页 |
| 1.2.2 mRNA提取、cDNA合成 | 第50-51页 |
| 1.2.3 qRT-PCR检测牦牛不同器官PDGF-A和PDGFR-A基因表达 | 第51页 |
| 1.2.4 WesternBlot检测牦牛牦牛不同器官PDGF-A和PDGFR-A蛋白表达 | 第51页 |
| 1.2.5 免疫组化方法检测牦牛不同器官PDGFA和PDGFR-A蛋白的定位 | 第51-52页 |
| 1.2.6 数据分析 | 第52页 |
| 2 结果 | 第52-56页 |
| 2.1 牦牛不同器官PDGFA和PDGFR-A基因表达水平 | 第52页 |
| 2.2 牦牛不同器官PDGFA和PDGFR-A蛋白表达水平 | 第52-53页 |
| 2.3 PDGFA和PDGFR-A蛋白在牦牛不同器官表达定位 | 第53-56页 |
| 3 讨论 | 第56-58页 |
| 4 小结 | 第58-59页 |
| 第五章 PDGFA、PDGFR-A在牦牛脑组织的表达与定位 | 第59-69页 |
| 1 材料与方法 | 第60-61页 |
| 1.1 材料 | 第60页 |
| 1.2 方法 | 第60-61页 |
| 1.2.1 引物的设计与合成 | 第60页 |
| 1.2.2 qRT-PCR检测牦牛脑组织不同部位PDGFA和PDGFR-A基因的表达 | 第60页 |
| 1.2.3 WesternBlot检测牦牛脑组织PDGFA和PDGFR-A蛋白的表达 | 第60-61页 |
| 1.2.4 免疫组化方法检测牦牛脑组织中PDGFA和PDGFR-A蛋白的表达 | 第61页 |
| 1.2.5 数据分析 | 第61页 |
| 2 结果 | 第61-65页 |
| 2.1 牦牛脑组织 PDGFA 和 PDGFR-A mRNA 的表达水平 | 第61-62页 |
| 2.2 牦牛脑组织 PDGFA 和 PDGFR-A 蛋白表达水平 | 第62-64页 |
| 2.3 PDGFA和PDGFR-A在牦牛脑组织表达定位 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65-67页 |
| 4 小结 | 第67-69页 |
| 第六章 PDGFA通过调控HIF-1A及细胞凋亡抑制低氧微环境对牦牛睾丸支持细胞的损伤 | 第69-84页 |
| 1 材料与方法 | 第70-73页 |
| 1.1 材料 | 第70页 |
| 1.2 方法 | 第70-73页 |
| 1.2.1 引物的设计与合成 | 第70页 |
| 1.2.2 低氧微环境对牦牛SCs的应激 | 第70-71页 |
| 1.2.3 PDGF-A对牦牛SCs低氧适应性的作用 | 第71页 |
| 1.2.4 q RT-PCR 检测不同处理细胞相关基因的表达水平 | 第71-72页 |
| 1.2.5 WB检测不同处理细胞中相关蛋白的表达水平 | 第72页 |
| 1.2.6 免疫细胞荧光染色检测PDGFA和PDGFR-A的表达 | 第72页 |
| 1.2.7 数据分析 | 第72-73页 |
| 2 结果 | 第73-79页 |
| 2.1 低氧微环境对HIF-1A在牦牛SCs表达的调控 | 第73-74页 |
| 2.2 低氧微环境对PDGFA和PDGFR-A在牦牛SCs表达的调控 | 第74-76页 |
| 2.3 低氧微环境对Bax和Bcl-2在牦牛SCs表达的调控 | 第76页 |
| 2.4 PDGFA对牦牛SCs低氧微环境应激时HIF-1A表达的影响 | 第76-77页 |
| 2.5 PDGFA对牦牛SCs低氧微环境应激时Bax和Bcl-2表达的影响 | 第77-78页 |
| 2.6 PDGFA和PDGFR-A在牦牛SCs表达的定位 | 第78-79页 |
| 3 讨论 | 第79-83页 |
| 4 小结 | 第83-84页 |
| 全文总结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 作者简介 | 第108-109页 |
| 导师简介 | 第109-110页 |
