| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 符号说明 | 第15-17页 |
| 第一部分 文献综述 | 第17-39页 |
| 综述一 抑郁症病理机制研究概况 | 第17-30页 |
| 1 神经递质功能失常 | 第17页 |
| 2 神经内分泌功能失调 | 第17-19页 |
| 3 神经可塑性假说 | 第19页 |
| 4 神经营养因子功能失调 | 第19-20页 |
| 5 遗传因素 | 第20页 |
| 6 细胞因子的影响 | 第20-21页 |
| 7 信号通路失调 | 第21-23页 |
| 8 小结 | 第23页 |
| 参考文献 | 第23-30页 |
| 综述二 HPA轴学说与抑郁症病理机制研究 | 第30-39页 |
| 1 应激与神经-内分泌-免疫网络调节 | 第30-31页 |
| 2 抑郁症HPA轴亢进学说 | 第31-32页 |
| 3 HPA轴的负反馈调节 | 第32-33页 |
| 4 电针干预HPA轴的抗抑郁作用 | 第33-34页 |
| 5 展望 | 第34页 |
| 参考文献 | 第34-39页 |
| 前言 | 第39-41页 |
| 第二部分 实验研究 | 第41-56页 |
| 实验一 阻断剂条件下电针对CUMS大鼠行为学的影响 | 第41-46页 |
| 1 材料 | 第41页 |
| 2 方法 | 第41-44页 |
| 3 结果 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 实验二 ELISA法检测阻断剂条件下电针对CUMS大鼠血清ACTH、垂体ACTH、血清CORT与下丘脑CRH含量的影响 | 第46-53页 |
| 1 材料 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-47页 |
| 3 结果 | 第47-51页 |
| 4 小结 | 第51-53页 |
| 实验三 免疫组化法检测阻断剂条件下电针对CUMS大鼠海马GR含量的影响 | 第53-56页 |
| 1 材料 | 第53页 |
| 2 方法 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54页 |
| 4 小结 | 第54-56页 |
| 第三部分 分析讨论 | 第56-65页 |
| 1 本团队前期相关研究基础 | 第56页 |
| 2 动物模型的选择 | 第56-57页 |
| 3 穴位的选择 | 第57页 |
| 4 阳性对照药物的选择 | 第57页 |
| 5 阻断剂的选择 | 第57-58页 |
| 6 阻断剂条件下电针对CUMS大鼠行为学的影响 | 第58页 |
| 7 本研究关键指标的选择及依据 | 第58-60页 |
| 7.1 电针干预HPA轴的抗抑郁作用 | 第58-59页 |
| 7.2 模型大鼠血清ACTH的变化 | 第59页 |
| 7.3 模型大鼠垂体ACTH的变化 | 第59-60页 |
| 7.4 模型大鼠血清CORT的变化 | 第60页 |
| 7.5 模型大鼠下丘脑CRH的变化 | 第60页 |
| 8 JNK信号通路与抑郁症 | 第60-64页 |
| 8.1 JNK信号转导通路 | 第60-61页 |
| 8.2 JNK信号通路与细胞凋亡 | 第61-62页 |
| 8.3 JNK信号通路与GR | 第62页 |
| 8.4 SP600125阻断条件下电针对JNK信号通路的影响增强 | 第62-63页 |
| 8.5 免疫组化法检测阻断剂条件下电针对CUMS大鼠海马GR含量的影响 | 第63-64页 |
| 9 指标关联示意图 | 第64页 |
| 10 展望 | 第64-65页 |
| 结语 | 第65-66页 |
| 1 结论 | 第65页 |
| 2 创新性 | 第65页 |
| 3 存在问题与不足 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第74-76页 |
| 附图 | 第76页 |
