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利用RNA干扰方法控制褐飞虱的探索及对转基因Bt水稻S21的评价研究

致谢第10-11页
摘要第11-13页
Abstract第13-15页
1. 文献综述第16-48页
    1.1 褐飞虱概述第16-19页
        1.1.1 褐飞虱形态特征第16页
        1.1.2 褐飞虱分布第16-17页
        1.1.3 褐飞虱危害特点第17-18页
        1.1.4 褐飞虱防治状况第18-19页
    1.2 RNA1(RNA interference)概述第19-38页
        1.2.1 RNAi的分子机制第19-22页
        1.2.2 RNAi的特点第22-23页
        1.2.3 昆虫RNAi实现方法第23-24页
        1.2.4 影响RNAi效率的因素第24-25页
        1.2.5 RNAi在植物中的应用第25-28页
        1.2.6 RNAi在昆虫中的应用第28-36页
            1.2.6.1 昆虫基因功能的研究第28页
            1.2.6.2 害虫防治中的应用第28-36页
        1.2.7 RNAi载体构建方法第36-38页
    1.3 V-ATPase概述第38-41页
        1.3.1 V-ATPase的结构第38-39页
        1.3.2 V_1的结构第39-40页
        1.3.3 V_0的结构第40页
        1.3.4 V-ATPase活性的调节第40-41页
        1.3.5 V-ATPase的功能第41页
    1.4 EcR(ecdysone receptor)概述第41-44页
        1.4.1 EcR的结构第42-43页
        1.4.2 EcR的功能第43-44页
    1.5 海藻糖合成酶(trehalose phosphate synthase,TPS)概述第44-46页
        1.5.1 海藻糖的功能第44-45页
        1.5.2 海藻糖合成酶基因的研究第45-46页
    1.6 研究目的和意义第46-48页
2. 材料和方法第48-56页
    2.1 材料第48-49页
        2.1.1 供试昆虫第48页
        2.1.2 植物材料第48页
        2.1.3 菌株第48页
        2.1.4 主要工具酶第48页
        2.1.5 主要试剂和试剂盒第48-49页
        2.1.6 各种培养基的配置第49页
        2.1.7 常用仪器第49页
    2.2 论文中涉及常用分子生物学实验方法第49-56页
        2.2.1 CTAB法提取植物基因组DNA第49-50页
        2.2.2 PCR反应第50页
        2.2.3 PCR产物加A第50页
        2.2.4 凝胶回收第50-51页
        2.2.5 PCR产物纯化第51-52页
        2.2.6 质粒提取第52页
        2.2.7 酶切反应第52-53页
        2.2.8 连接反应第53页
        2.2.9 T克隆第53页
        2.2.10 大肠杆菌TG1感受态制备(CaCl_2法)第53-54页
        2.2.11 大肠杆菌的转化第54页
        2.2.12 根瘤土壤农杆菌(LBA4404)感受态的制备第54-55页
        2.2.13 根瘤土壤农杆菌(LBA4404)的电击转化第55-56页
3. 褐飞虱饲喂法RNAi的研究第56-69页
    3.1 方法第56-63页
        3.1.1 dsRNA的合成第56-59页
            3.1.1.1 褐飞虱总RNA的提取及cDNA第一链的合成第56-57页
            3.1.1.2 dsRNA合成模板的PCR扩增第57-58页
            3.1.1.3 利用试剂盒进行dsRNA的合成及纯化第58-59页
        3.1.2 dsRNA稳定性的测定第59-61页
        3.1.3 褐飞虱dsRNA的饲喂第61-63页
            3.1.3.1 饲喂dsRNA对褐飞虱存活率的影响第61-62页
            3.1.3.2 饲喂dsRNA后qRT-PCR检测目的基因mRNA表达水平第62-63页
    3.2 实验结果第63-68页
        3.2.1 dsRNA的合成第63-64页
            3.2.1.1 dsRNA合成模板的PCR扩增获取第63页
            3.2.1.2 dsRNA的制备第63-64页
        3.2.2 dsRNA稳定性的检测第64-65页
        3.2.3 饲喂dsRNA对褐飞虱的影响第65-68页
            3.2.3.1 饲喂dsRNA对褐飞虱存活率的影响第65-66页
            3.2.3.2 饲喂dsRNA对褐飞虱靶标mRNA表达水平的影响第66-68页
    3.3 小结第68-69页
4. 培育转基因水稻进行褐飞虱RNAi的研究第69-102页
    4.1 方法第69-83页
        4.1.1 干扰载体的构建第69-74页
            4.1.1.1 pUCm-T-253intron载体构建第69-71页
            4.1.1.2 pUCm-T-253intron-Gene载体构建第71-72页
            4.1.1.3 pUCm-T-Gene-253intron-Gene载体构建第72-73页
            4.1.1.4 1300-253intron-RNAi载体构建第73-74页
        4.1.2 转基因水稻的培育第74-76页
            4.1.2.1 水稻成熟胚愈伤组织的诱导第74页
            4.1.2.2 农杆菌与水稻愈伤的共培养第74-75页
            4.1.2.3 抗性愈伤组织的筛选第75页
            4.1.2.4 转化植株的再生与培养第75-76页
        4.1.3 转基因水稻的鉴定第76-80页
            4.1.3.1 PCR方法鉴定T_0代转基因水稻第76页
            4.1.3.2 T_0代转基因水稻dsRNA检测第76-78页
            4.1.3.3 T_1代转基因水稻dsRNA检测第78页
            4.1.3.4 T_1代转基因水稻siRNA检测第78-80页
        4.1.4 褐飞虱取食转基因水稻生测第80-83页
            4.1.4.1 转基因水稻对褐飞虱生长发育的影响第80-82页
            4.1.4.2 转基因水稻对褐飞虱目的基因mRNA的影响第82页
            4.1.4.3 转基因水稻对继代饲养第三代褐飞虱生长发育的影响第82-83页
            4.1.4.4 转基因水稻对继代饲养第三代褐飞虱目的基因mRNA的影响第83页
    4.2 实验结果第83-97页
        4.2.1 干扰载体的构建第83-87页
            4.2.1.1 pUCm-T-intron载体鉴定第83-84页
            4.2.1.2 pUCm-T-intron-Gene载体构建第84-86页
            4.2.1.3 pUCm-T-Gene-253intron-Gene载体构建第86页
            4.2.1.4 1300-253intron-RNAi载体构建第86-87页
        4.2.2 转基因水稻的鉴定第87-91页
            4.2.2.1 PCR方法鉴定T_0代转基因水稻第87-88页
            4.2.2.2 T_0代转基因水稻dsRNA检测第88页
            4.2.2.3 T_1代转基因水稻dsRNA检测第88-90页
            4.2.2.4 T_1代转基因水稻siRNA检测第90-91页
        4.2.3 褐飞虱取食转基因水稻生测第91-97页
            4.2.3.1 转基因水稻对褐飞虱生长发育的影响第91-93页
            4.2.3.2 转基因水稻对褐飞虱靶标mRNA的影响第93-95页
            4.2.3.3 转基因水稻对继代饲养第三代褐飞虱生长发育的影响第95-96页
            4.2.3.4 转基因水稻对继代饲养第三代褐飞虱靶标mRNA的影响第96-97页
    4.3 小结第97-98页
    4.4 总结与讨论第98-102页
5. 对绿色组织特异表达抗虫抗草甘膦转基因Bt水稻S21的评价第102-114页
    5.1 引言第102-105页
    5.2 研究背景第105-106页
    5.3 研究目的第106页
    5.4 材料与方法第106-108页
        5.4.1 试验材料第106页
        5.4.2 供试昆虫第106-107页
        5.4.3 试验方法第107-108页
            5.4.3.1 转基因植株S21对草甘膦抗性的检测第107页
            5.4.3.2 转基因植株S21对二化螟杀虫活性的室内检测第107页
            5.4.3.3 转基因植株S21 Bt蛋白含量的测定第107-108页
            5.4.3.4 转基因植株S21农艺性状及抗虫效果的田间考查第108页
    5.5 结果第108-112页
        5.5.1 转基因植株S21对草甘膦的抗性第108-109页
        5.5.2 转基因植株S21对二化螟的杀虫活性第109-110页
        5.5.3 转基因植株S21 Bt蛋白含量的测定第110页
        5.5.4 转基因植株S21农艺性状及抗虫效果第110-112页
    5.6 小结与讨论第112-114页
参考文献第114-136页
附录Ⅰ 实验中所用主要溶液第136-141页
附录Ⅱ 实验常用主要仪器第141-142页
附录Ⅲ 基因序列第142-143页

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