| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 符号说明 | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1 獭兔的品种简介 | 第11-15页 |
| 1.1 獭兔的体型外貌 | 第11页 |
| 1.2 獭兔的繁殖性能 | 第11-12页 |
| 1.3 獭兔的产肉性能 | 第12页 |
| 1.4 獭兔的毛皮性能 | 第12页 |
| 1.5 獭兔品种的色型特征 | 第12-15页 |
| 2 基因芯片技术简介 | 第15-17页 |
| 2.1 基因芯片的概念及原理 | 第15页 |
| 2.2 基因芯片的分类及特点 | 第15-16页 |
| 2.3 基因芯片技术的应用 | 第16-17页 |
| 3 与哺乳动物毛色形成相关的部分信号通路和基因 | 第17-20页 |
| 3.1 环腺苷酸-蛋白激酶A(cAMP-PKA)信号通路 | 第17-18页 |
| 3.2 Wnt/β-catenin信号通路 | 第18页 |
| 3.3 黑素皮质素受体1基因(MClR) | 第18-19页 |
| 3.4 cAMP反应元件结合蛋白1(Creb1) | 第19页 |
| 3.5 小眼畸形相关转录因子(MITF) | 第19-20页 |
| 3.6 酷氨酸酶（TYR)及酪氨酸酶相关蛋白（TYRP1、TYRP2) | 第20页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 基因芯片筛选獭兔毛色形成相关基因的初步探究 | 第21-32页 |
| 1 材料与方法 | 第21-25页 |
| 1.1 样本采集 | 第21页 |
| 1.2 基因芯片 | 第21页 |
| 1.3 仪器与试剂 | 第21-23页 |
| 1.4 RNA提取和纯化 | 第23-24页 |
| 1.5 芯片实验 | 第24页 |
| 1.6 引物设计及合成 | 第24页 |
| 1.7 cDNA制备 | 第24页 |
| 1.8 荧光定量PCR验证 | 第24-25页 |
| 2 结果 | 第25-30页 |
| 2.1 差异表达基因 | 第25-27页 |
| 2.2 GO分类结果 | 第27-28页 |
| 2.3 与毛色相关差异基因所在的信号通路 | 第28-29页 |
| 2.4 qRT-PCR验证差异基因 | 第29-30页 |
| 3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 獭兔Creb1基因的CDs克隆、生物信息学分析及真核载体构建 | 第32-47页 |
| 1 材料与方法 | 第32-38页 |
| 1.1 试验动物 | 第32页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第32-33页 |
| 1.3 试验方法 | 第33-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-44页 |
| 2.1 獭兔Creb1基因编码区的扩增 | 第38-39页 |
| 2.2 克隆质粒的酶切鉴定 | 第39页 |
| 2.3 重组表达质粒的鉴定结果 | 第39-41页 |
| 2.4 序列分析及同源性比较结果 | 第41-42页 |
| 2.5 獭兔与其它物种的系统进化分析 | 第42-43页 |
| 2.6 Creb1蛋白二级和三级结构预测 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-47页 |
| 第四章 Creb1基因编码序列多态性检测 | 第47-54页 |
| 1 材料与方法 | 第47-50页 |
| 1.1 试验动物 | 第47页 |
| 1.2 主要仪器 | 第47页 |
| 1.3 主要试剂及其配制 | 第47-48页 |
| 1.4 DNA提取 | 第48-49页 |
| 1.5 DNA浓度和纯度检测 | 第49页 |
| 1.6 引物设计 | 第49页 |
| 1.7 PCR扩增 | 第49-50页 |
| 1.8 PCR产物检测 | 第50页 |
| 1.9 PCR-SSCP检测 | 第50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-52页 |
| 2.1 Creb1基因各外显子的琼脂糖凝胶电泳(AGE)结果 | 第50-51页 |
| 2.2 Creb1基因各外显子的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(N-PAGE)结果 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 第五章 全文结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表和参与发表的学术论文目录 | 第65-66页 |
