| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1.1 水稻倒伏类型 | 第10-11页 |
| 1.2 水稻倒伏的危害 | 第11-12页 |
| 1.2.1 倒伏加速水稻衰老 | 第11页 |
| 1.2.2 倒伏降低水稻产量 | 第11页 |
| 1.2.3 倒伏影响水稻的籽粒品质 | 第11-12页 |
| 1.3 水稻抗倒伏相关基因的研究 | 第12-20页 |
| 1.3.1 茎秆化学成分相关基因研究 | 第12-15页 |
| 1.3.2 株型性状相关基因研究 | 第15-20页 |
| 1.4 本研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 第二章 试验材料与方法 | 第21-45页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 水稻供试材料 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 载体与菌株 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-45页 |
| 2.2.1 遗传群体的构建 | 第23-24页 |
| 2.2.2 相关性状的测量 | 第24页 |
| 2.2.3 水稻DNA的提取 | 第24页 |
| 2.2.4 PCR反应和凝胶电泳检测分析 | 第24-27页 |
| 2.2.5 粗秆基因的定位 | 第27-28页 |
| 2.2.6 水稻RNA的提取和反转录 | 第28-30页 |
| 2.2.7 qRT-PCR | 第30页 |
| 2.2.8 目的片段的纯化回收 | 第30-31页 |
| 2.2.9 相关载体的构建 | 第31-37页 |
| 2.2.10 大肠杆菌感受态的制备 | 第37-38页 |
| 2.2.11 农杆菌感受态的制备 | 第38-39页 |
| 2.2.12 大肠杆菌的热击转化 | 第39页 |
| 2.2.13 大肠杆菌的质粒提取 | 第39-40页 |
| 2.2.14 农杆菌的电击转化 | 第40-41页 |
| 2.2.15 水稻农杆菌介导的遗传转化 | 第41-42页 |
| 2.2.16 水稻原生质体的制备与转化 | 第42-43页 |
| 2.2.17 水稻组织GUS染色 | 第43-45页 |
| 第三章 结果与分析 | 第45-54页 |
| 3.1 研究材料的表型分析 | 第45-47页 |
| 3.2 粗秆基因的遗传分析和基因定位 | 第47-49页 |
| 3.2.1 粗秆基因的遗传分析 | 第47页 |
| 3.2.2 粗秆基因的基因定位 | 第47-49页 |
| 3.3 候选基因的预测 | 第49-51页 |
| 3.3.1 候选基因OsTB1的表达量分析 | 第49-50页 |
| 3.3.2 不同品种候选基因OsTB1序列的差异性分析 | 第50-51页 |
| 3.4 转基因互补功能验证 | 第51-52页 |
| 3.5 基因组织表达和亚细胞定位 | 第52-54页 |
| 3.5.1 启动子GUS融合的组织表达 | 第52页 |
| 3.5.2 亚细胞定位结果 | 第52-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-57页 |
| 4.1 TC1是继SCM3后另一个OsTB1等位的控制茎秆粗细的主效基因 | 第54页 |
| 4.2 OsTB1可能与sd1存在某种联系 | 第54-55页 |
| 4.3 Kasalath易发生倒伏原因的分析,及对sd1的思考 | 第55-56页 |
| 4.4 控制不良性状的基因敲除是重要遗传改良手段 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 附录 | 第64-70页 |
| 附录1 水稻转化实验相关试剂配方 | 第64-69页 |
| 附录2 GUS染液的配制 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
