摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 前言 | 第11-19页 |
1.1 病毒结构 | 第11-13页 |
1.2 流行病学 | 第13页 |
1.3 混合感染 | 第13-14页 |
1.4 传播 | 第14页 |
1.5 感染靶标器官和发病机理 | 第14-15页 |
1.6 持续感染 | 第15页 |
1.7 诊断 | 第15-16页 |
1.8 风险因素 | 第16页 |
1.9 治疗 | 第16-17页 |
1.10 小结 | 第17页 |
1.11 PEGFP真核表达系统 | 第17-18页 |
1.12 双荧光素酶报告系统 | 第18-19页 |
第二章 实验材料 | 第19-23页 |
2.1 载体、菌株与细胞系 | 第19页 |
2.2 试剂 | 第19页 |
2.3 实验所需各种抗生素 | 第19-20页 |
2.4 实验用各种溶液 | 第20-21页 |
2.4.1 LB液体培养基 | 第20页 |
2.4.2 LB固体平板及抗性筛选平板制备 | 第20-21页 |
2.4.3 DMEM细胞培养基配制 | 第21页 |
2.4.4 PBS缓冲液配制 | 第21页 |
2.4.5 胰蛋白酶溶液配制 | 第21页 |
2.5 引物设计 | 第21-23页 |
2.5.1 HBoV突变引物设计 | 第21-22页 |
2.5.2 NS1截短引物设计 | 第22-23页 |
第三章 实验方法 | 第23-27页 |
3.1 HBoV1启动子及各截短突变表达活性的检测 | 第23页 |
3.2 检测HBoV1启动子在其它哺乳动物细胞系中的活性 | 第23页 |
3.3 HBoV1启动子全长及各截短突变的活性检测 | 第23-24页 |
3.4 HBoV1启动子各点突变的的克隆及活性检测 | 第24-25页 |
3.5 NS1对HBoV1启动子的调控作用 | 第25-26页 |
3.6 NS1的亚细胞定位 | 第26-27页 |
第四章 实验结果 | 第27-42页 |
4.1 HBoV1启动子在哺乳动物细胞中的活性 | 第27-28页 |
4.2 HBoV1启动子在293T细胞内的高表达活性 | 第28-30页 |
4.3 HBoV1启动子关键区域的鉴定分析 | 第30-34页 |
4.5 NS1蛋白对HBoV1启动子的反式作用活性 | 第34-37页 |
4.6 NS1对炎症相关因子的调节 | 第37-39页 |
4.7 NS1在细胞内的定位 | 第39-42页 |
第五章 结果讨论 | 第42-44页 |
参考文献 | 第44-54页 |
硕士期间发表论文 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |