摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
文献综述 | 第11-21页 |
1 植物花器官研究 | 第11-15页 |
1.1 花器官发育ABC模型及发展 | 第11-13页 |
1.2 水稻花器官发育的MADS-box基因 | 第13-14页 |
1.3 非MADS-box类花器官特征基因参与花发育 | 第14-15页 |
2 水稻花器官发育异常突变体 | 第15-16页 |
3 转录因子研究 | 第16-21页 |
3.1 转录因子概况 | 第16-17页 |
3.2 转录因子家族分类 | 第17-18页 |
3.3 锌指转录因子结构 | 第18-19页 |
3.4 锌指转录因子参与调控生长发育 | 第19-20页 |
3.5 锌指转录因子参与胁迫调节 | 第20-21页 |
第一章 水稻花器官发育控制基因PSD3的定位 | 第21-34页 |
引言 | 第21-22页 |
实验材料和方法 | 第22-25页 |
1 实验材料 | 第22-23页 |
1.1 突变体材料 | 第22页 |
1.2 定位群体构建 | 第22页 |
1.3 正常池和突变池 | 第22页 |
1.4 所用引物 | 第22-23页 |
2 实验方法 | 第23-25页 |
2.1 psd3的表型观察和遗传特性分析 | 第23页 |
2.2 水稻叶片DNA的提取 | 第23页 |
2.3 PCR扩增 | 第23页 |
2.4 聚丙烯酰胺胶电泳(6%的非变性聚丙烯酰胺凝胶) | 第23-24页 |
2.5 PSD3的基因初步定位 | 第24页 |
2.6 PSD3的基因精细定位 | 第24页 |
2.7 连锁分析 | 第24页 |
2.8 定位区间基因分析 | 第24页 |
2.9 候选基因的初步分析 | 第24-25页 |
结果与分析 | 第25-32页 |
1 psd3突变体的形态特征 | 第25页 |
2 PSD3基因的遗传分析 | 第25-26页 |
3 PSD3基因的初步定位 | 第26-28页 |
4 PSD3基因的精细定位 | 第28-30页 |
5 候选基因的初步确定 | 第30-32页 |
讨论 | 第32-34页 |
1 psd3是一个新的花器官发育异常突变体 | 第32页 |
2 水稻花器官形态建成关键基因PSD3基因可能编码zinc-finger蛋白 | 第32-33页 |
3 下一步工作 | 第33-34页 |
第二章 水稻锌指基因ZOS2-01的功能分析 | 第34-49页 |
引言 | 第34-35页 |
实验材料和方法 | 第35-39页 |
1 实验材料 | 第35页 |
1.1 供试的水稻材料 | 第35页 |
1.2 载体和菌株 | 第35页 |
2 实验方法 | 第35-39页 |
2.1 实验室常用方法(见附录3) | 第35页 |
2.2 水稻SUP-like基因的获得 | 第35页 |
2.3 RT-PCR分析 | 第35-36页 |
2.4 pZOS2-O1:GUS的构建 | 第36页 |
2.5 干扰载体pTCK303-ZOS2-01的构建 | 第36-37页 |
2.6 农杆菌介导的水稻遗传转化(侵染成熟胚愈伤的方法) | 第37-38页 |
2.7 转基因植株的检测 | 第38-39页 |
结果与分析 | 第39-47页 |
1 水稻SUP-like结构的基因的获得 | 第39-40页 |
2 水稻SUP-like基因的表达分析 | 第40-42页 |
3 ZOS2-01(ZF1)可能是水稻的SUP-like基因 | 第42页 |
4 ZOS2-01基因启动子的GUS表达载体构建、遗传转化及活性检测 | 第42-44页 |
5 ZOS2-01干扰载体pTCK303-ZOS2-01的构建及遗传转化 | 第44-47页 |
讨论 | 第47-49页 |
参考文献 | 第49-59页 |
附录 | 第59-70页 |
附录1 基因定位相关的药品和新开发引物 | 第59-61页 |
附录2 分子生物学相关实验方法 | 第61-63页 |
附录3 本实验所用的其他实验方法 | 第63-66页 |
附录4 本实验所用基本培养基配方 | 第66-69页 |
附录5 GUS活性检测重要溶液 | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |