| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略语一览表 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 灰树花研究概况 | 第11-17页 |
| 1.2.1 灰树花简介 | 第11-12页 |
| 1.2.2 灰树花的栽培史 | 第12-13页 |
| 1.2.3 灰树花的营养医学价值 | 第13-17页 |
| 1.3 真菌多糖的提取分离纯化方法 | 第17-19页 |
| 1.3.1 真菌多糖的提取方法 | 第17页 |
| 1.3.2 真菌多糖的分离纯化方法 | 第17-19页 |
| 1.4 真菌多糖分子结构鉴定 | 第19页 |
| 1.4.1 真菌多糖纯度鉴定 | 第19页 |
| 1.4.2 真菌多糖分子特征鉴定 | 第19页 |
| 1.5 本项目研究的目的、意义和内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 本项目研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.5.2 本项目研究的内容 | 第20-21页 |
| 参考文献 | 第21-27页 |
| 第二章 灰树花液体发酵条件优化分析 | 第27-41页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-31页 |
| 2.2.1 培养基配制 | 第28页 |
| 2.2.2 液体发酵试验参数评价方法 | 第28-29页 |
| 2.2.3 苯酚-浓硫酸法测定多糖含量测定方法 | 第29-30页 |
| 2.2.4 灰树花液体发酵条件优化 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-38页 |
| 2.3.1 不同碳氮源对灰树花液态发酵影响 | 第31-33页 |
| 2.3.2 各因素对灰树花液体发酵影响 | 第33-38页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-41页 |
| 第三章 灰树花菌丝体粗多糖提取条件优化 | 第41-51页 |
| 3.1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第41页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第41-42页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第42-44页 |
| 3.2 结果与分析 | 第44-48页 |
| 3.2.1 微波功率对多糖得率影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 微波辐照处理时间对多糖的率影响 | 第45页 |
| 3.2.3 浸提时间对多糖得率影响 | 第45-46页 |
| 3.2.4 料液比对多糖得率影响 | 第46-47页 |
| 3.2.5 灰树花菌丝体多糖提取正交试验结果 | 第47-48页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-51页 |
| 第四章 灰树花多糖提取物的降血糖活性研究 | 第51-61页 |
| 4.1 引言 | 第51-52页 |
| 4.2 实验材料与实验仪器 | 第52页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第52页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第52页 |
| 4.3 实验方法与结果 | 第52-59页 |
| 4.3.1 四氧嘧啶糖尿病小鼠造模方法及分组 | 第52-53页 |
| 4.3.2 小鼠体重测定 | 第53-55页 |
| 4.3.3 小鼠空腹血糖指标测定 | 第55-57页 |
| 4.3.4 糖尿病小鼠糖耐量指标测定 | 第57-59页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-61页 |
| 第五章 灰树花多糖的分离纯化及基本结构 | 第61-71页 |
| 5.1 材料与方法 | 第61-63页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第61页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第61-62页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第62-63页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第63-68页 |
| 5.2.1 脱色效果分析 | 第63-64页 |
| 5.2.2 柱层析纯化结果 | 第64页 |
| 5.2.3 GFP1和GFP2进行200-700nm波长扫描 | 第64-66页 |
| 5.2.4 Sephadex G-200柱层析纯化结果 | 第66-67页 |
| 5.2.5 GFP1红外光谱扫描结果 | 第67-68页 |
| 5.2.6 GFP1的1H NMR结果 | 第68页 |
| 5.3 小结与讨论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-71页 |
| 总结和展望 | 第71-73页 |
| 本论文的特色和创新点 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |