| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-26页 |
| 1 硬骨鱼类性腺发育研究 | 第16-19页 |
| 1.1 研究概况 | 第16页 |
| 1.2 卵巢概述 | 第16-18页 |
| 1.2.1 卵巢结构及分期 | 第16-17页 |
| 1.2.2 卵细胞发育分期 | 第17-18页 |
| 1.3 精巢概述 | 第18-19页 |
| 1.3.1 精巢结构及分期 | 第18页 |
| 1.3.2 精子发生 | 第18-19页 |
| 1.3.3 贮精囊 | 第19页 |
| 2 性类固醇激素的研究 | 第19-20页 |
| 3 芳香化酶研究进展 | 第20-21页 |
| 4 P450c17 的研究进展 | 第21-23页 |
| 5 绿鳍马面鲀研究概况 | 第23-24页 |
| 5.1 形态学特征与分布 | 第23-24页 |
| 5.2 繁殖与养殖研究 | 第24页 |
| 6 本研究目的和意义 | 第24-26页 |
| 第二章 绿鳍马面鲀性腺发育周年变化的组织学研究 | 第26-40页 |
| 1 材料与方法 | 第26-27页 |
| 1.1 实验鱼 | 第26页 |
| 1.2 样品采集 | 第26页 |
| 1.3 试验方法 | 第26-27页 |
| 1.4 数据分析 | 第27页 |
| 2 结果 | 第27-36页 |
| 2.1 繁殖期及产卵类型 | 第27页 |
| 2.2 性腺形态 | 第27-28页 |
| 2.3 卵巢分期 | 第28-29页 |
| 2.4 精巢分期 | 第29-34页 |
| 2.4.1 生精部 | 第29-34页 |
| 2.4.2 贮精囊 | 第34页 |
| 2.5 性腺成熟系数（GSI）、肝重指数（HSI）和肥满度(CF)周期变化 | 第34-36页 |
| 3 讨论 | 第36-39页 |
| 4 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 绿鳍马面鲀血清性类固醇激素水平周年变化 | 第40-50页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 实验鱼 | 第40页 |
| 1.2 样品采集 | 第40页 |
| 1.3 实验仪器 | 第40-41页 |
| 2 放射免疫测定方法（RIA） | 第41-44页 |
| 2.1 测定原理 | 第41页 |
| 2.2 试剂盒 | 第41页 |
| 2.3 操作步骤 | 第41页 |
| 2.4 结果计算 | 第41页 |
| 2.5 技术指标 | 第41-44页 |
| 3 结果 | 第44-47页 |
| 3.1 雌性绿鳍马面鲀血清中 E2的周期变化 | 第44页 |
| 3.2 雌性绿鳍马面鲀血清中 T 的周期变化 | 第44-46页 |
| 3.3 雄性绿鳍马面鲀血清中 E2的周期变化 | 第46页 |
| 3.4 雄性绿鳍马面鲀血清中 T 的周期变化 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 小结 | 第49-50页 |
| 第四章 绿鳍马面鲀芳香化酶基因的克隆与时空表达 | 第50-68页 |
| 1 材料方法 | 第50-56页 |
| 1.1 实验鱼 | 第50-51页 |
| 1.2 样品采集 | 第51页 |
| 1.3 实验仪器及试剂 | 第51页 |
| 1.4 总 RNA 提取和 cDNA 合成 | 第51-53页 |
| 1.4.1 实验前准备 | 第51-52页 |
| 1.4.2 总 RNA 提取 | 第52页 |
| 1.4.3 cDNA 合成 | 第52-53页 |
| 1.5 引物 | 第53页 |
| 1.6 芳香化酶基因的克隆 | 第53-55页 |
| 1.6.1 CYP19A 的全长克隆 | 第54页 |
| 1.6.2 CYP19B 的片段克隆 | 第54-55页 |
| 1.7 芳香化酶的基因表达 | 第55-56页 |
| 1.8 基因序列分析及系统进化树的构建 | 第56页 |
| 1.9 数据分析 | 第56页 |
| 2 结果 | 第56-65页 |
| 2.1 CYP19A 的全长序列分析和系统进化分析 | 第56-58页 |
| 2.2 CYP19B 的序列分析和系统进化分析 | 第58-61页 |
| 2.3 绿鳍马面鲀芳香化酶基因的组织表达 | 第61-63页 |
| 2.4 CYP19A 在生殖周期中的表达 | 第63页 |
| 2.5 CYP19B 在生殖周期中的表达 | 第63-65页 |
| 3 讨论 | 第65-67页 |
| 4 小结 | 第67-68页 |
| 第五章 绿鳍马面鲀 CYP17-Ⅰ基因的克隆与时空表达 | 第68-78页 |
| 1 材料与方法 | 第68-71页 |
| 1.1 实验鱼及样品采集 | 第68页 |
| 1.2 仪器及试剂 | 第68页 |
| 1.3 总 RNA 提取及引物 | 第68页 |
| 1.4 片段克隆 | 第68-70页 |
| 1.4.1 PCR 扩增 | 第68-69页 |
| 1.4.2 目的片段的获得 | 第69-70页 |
| 1.5 全长克隆 | 第70页 |
| 1.6 时空表达 | 第70-71页 |
| 1.7 序列分析、系统发生树的构建 | 第71页 |
| 1.8 数据分析 | 第71页 |
| 2 结果 | 第71-76页 |
| 2.1 CYP17-Ⅰ的全长序列分析及系统发生树分析 | 第71-74页 |
| 2.2 CYP17-Ⅰ基因在不同组织中的表达 | 第74-75页 |
| 2.3 CYP17-Ⅰ的在生殖周期中的表达 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-77页 |
| 4 小结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
