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SCFAs通过GPR41调控奶牛瘤胃上皮细胞炎症反应的研究

摘要第2-5页
Abstract第5-8页
符号说明第9-16页
第一章 文献综述第16-27页
    1 奶牛瘤胃上皮细胞体外培养研究进展第16-19页
        1.1 瘤胃上皮的生理功能第16-18页
            1.1.1 短链脂肪酸的吸收第16-17页
            1.1.2 参与钠、氢离子交换和维持瘤胃内环境的平衡第17-18页
        1.2 瘤胃上皮的体外培养第18-19页
    2 细胞永生化研究进展第19-22页
        2.1 细胞永生化机制第19-20页
        2.2 hTERT细胞永生化第20-21页
        2.3 人乳头瘤状病毒16型E6E7基因细胞永生化第21-22页
        2.4 SV40T细胞永生化第22页
    3 GPR41研究进展第22-25页
        3.1 GPR41与炎症的关系第22-23页
        3.2 GPR41与钙离子信号通路和交感神经系统的关系第23-25页
    4 研究目的和内容第25-27页
        4.1 研究目的与意义第25页
        4.2 研究内容第25-26页
        4.3 技术路线第26-27页
第二章 试验部分第27-91页
    试验一 永生化奶牛瘤胃上皮细胞系的建立第27-44页
        1 材料与方法第27-34页
            1.1 主要仪器第27页
            1.2 试验材料第27-28页
                1.2.1 试剂配制第28页
            1.3 试验方法第28-34页
                1.3.1 奶牛瘤胃上皮细胞原代培养第29页
                1.3.2 奶牛瘤胃上皮细胞的永生化和克隆第29页
                1.3.3 奶牛瘤胃上皮细胞角蛋白18的鉴定第29-30页
                1.3.4 奶牛瘤胃上皮细胞增殖分析第30页
                1.3.5 奶牛瘤胃上皮细胞核型分析第30页
                1.3.6 奶牛瘤胃上皮细胞衰老β-半乳糖苷酶染色分析第30页
                1.3.7 奶牛瘤胃上皮细胞吸收SCFAs分析第30-31页
                1.3.8 RT-PCR检测涉及SCFAs的转运蛋白和受体蛋白第31-32页
                1.3.9 Western Blotting第32-34页
            1.4 数据处理与分析第34页
        2 结果与分析第34-41页
            2.1 奶牛瘤胃上皮细胞的建立与特征第34-36页
            2.2 奶牛瘤胃上皮细胞角蛋白18的鉴定第36-37页
            2.3 奶牛瘤胃上皮细胞SCFAs相关转运蛋白和受体蛋白的鉴定第37-38页
            2.4 奶牛瘤胃上皮细胞对SCFAs吸收鉴定第38-39页
            2.5 奶牛瘤胃上皮细胞生长曲线分析第39-40页
            2.6 奶牛瘤胃上皮细胞β-半乳糖苷酶染色分析第40页
            2.7 奶牛乳腺上皮细胞核型分析第40-41页
        3 讨论第41-43页
        4 小结第43-44页
    试验二 SCFAs对相关短链脂肪酸转运蛋白和GPR41表达影响第44-51页
        1 材料与方法第44-45页
            1.1 主要仪器第44页
            1.2 试验材料第44页
            1.3 试验方法第44-45页
                1.3.1 SCFAs和不同pH对涉及SCFAs转运蛋白和GPR41表达影响第44页
                1.3.2 总RNA提取第44页
                1.3.3 反转录成cDNA第44-45页
                1.3.4 Real-time PCR第45页
            1.4 数据统计分析第45页
        2 结果与分析第45-48页
            2.1 SCFAs和不同pH对单羧酸转运蛋白MCT1和MCT4表达的影响第46页
            2.2 SCFAs和不同pH对NHE1、NHE2和NHE3表达影响第46-47页
            2.3 SCFAs和不同pH对GPR41表达的影响第47-48页
        3 讨论第48-49页
        4 小结第49-51页
    试验三 转录组分析SCFAs诱导BRECs的mRNA差异基因和差异信号通路第51-60页
        1 材料与方法第51-53页
            1.1 主要仪器第51页
            1.2 试验材料第51页
            1.3 试验设计第51页
            1.4 试验方法第51-53页
                1.4.1 总RNA提取第52页
                1.4.2 文库构建和测序第52-53页
            1.5 数据处理与分析第53页
        2 结果与分析第53-59页
            2.1 RNA-Seq的PCA得分图第53-54页
            2.2 mRNA差异基因表达分析第54-56页
            2.3 KEGG信号通路分析第56-59页
        3 讨论第59页
        4 小结第59-60页
    试验四 SCFAs对BRECs的促炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白表达的影响第60-74页
        1 材料与方法第60-63页
            1.1 主要仪器第60页
            1.2 试验材料第60页
            1.3 试验方法第60-62页
                1.3.1 qRT-PCR验证转录组第60页
                1.3.2 不同浓度SCFAs对炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白表达的影响第60-61页
                1.3.3 不同时间点对炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白表达的影响第61页
                1.3.4 总RNA提取第61页
                1.3.5 反转录成cDNA第61页
                1.3.6 Real-time PCR第61-62页
                1.3.7 Western bloiting第62页
            1.4 数据统计分析第62-63页
        2 结果与分析第63-70页
            2.1 SCFAs对BRECs的促炎症因子表达的影响第63页
            2.2 SCFAs对BRECs的趋化因子表达的影响第63-65页
            2.3 SCFAs对涉及Ca~(2+)信号通路中PLC β 2和IP3R1表达的影响第65页
            2.4 SCFAs对MAPK和NF-κ B信号分子表达的影响第65-66页
            2.5 不同浓度SCFAs对炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白表达的影响第66-68页
            2.6 不同时间点对炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白表达的影响第68-70页
        3 讨论第70-72页
        4 小结第72-74页
    试验五 GPR41调控BRECs炎症因子、趋化因子和紧密连接蛋白的表达第74-91页
        1 材料与方法第74-79页
            1.1 主要仪器第74页
            1.2 试验材料第74页
            1.3 试验方法第74-79页
                1.3.1 BRECs细胞电转条件摸索第74-75页
                1.3.2 靶位点设计及合成第75页
                1.3.3 gRNA引物添加接头第75页
                1.3.4 敲除载体的构建第75-76页
                1.3.5 转化Top 10感受态第76-77页
                1.3.6 筛选阳性重组子第77页
                1.3.7 电转敲除载体至BRECs第77页
                1.3.8 细胞测序验证GPR41敲除效率第77页
                1.3.9 BRECs单克隆的制备和生长第77页
                1.3.10 单克隆基因组DNA的提取第77-78页
                1.3.11 PCR扩增目的片段和Cruiser Enzyme酶切筛选阳性克隆第78-79页
                1.3.12 TA克隆第79页
                1.3.13 Real-time PCR第79页
            1.4 数据统计分析第79页
        2 结果与分析第79-88页
            2.1 不同电压对BRECs电转效率的影响第80页
            2.2 敲除载体的构建第80-81页
            2.3 单克隆BRECs的Cruiser Enzyme酶切筛选阳性克隆及测序第81-82页
            2.4 单克隆BRECs的TA克隆及测序第82-83页
            2.5 qRT-PCR验证CRISPR/Cas 9敲除GPR41的表达第83-84页
            2.6 GPR41对促炎症因子表达的影响第84-85页
            2.7 GPR41对趋化因子表达的影响第85-86页
            2.8 GPR41对紧密连接蛋白表达的影响第86-87页
            2.9 GPR41对Ca~(2+)信号通路关键分子表达的影响第87-88页
        3 讨论第88-90页
        4 小结第90-91页
第三章 全文总结第91-92页
    1 全文结论第91页
    2 创新点第91页
    3 进一步研究的问题第91-92页
参考文献第92-104页
致谢第104-105页
攻读学位期间发表的学术论文目录第105-106页
科研成果第106-107页

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