| 摘要 | 第7-9页 |
| Summary | 第9-11页 |
| 符号说明 | 第12-16页 |
| 1. 前言 | 第16-31页 |
| 1.1. 光合作用 | 第16页 |
| 1.2. 光合蛋白复合体 | 第16-18页 |
| 1.3. 线性电子传递(LEF)和环式电子传递(CEF) | 第18-20页 |
| 1.4. 光合作用的调控:短期反应 | 第20-22页 |
| 1.5. 光合作用的调控:长期反应 | 第22-23页 |
| 1.6. 横向异质性的结构优势 | 第23-24页 |
| 1.7. 影响膜折叠的因素 | 第24-29页 |
| 1.7.1. 类囊体膜蛋白的磷酸化状态 | 第24-27页 |
| 1.7.2. 膜内脂类分子的成分 | 第27页 |
| 1.7.3. 膜折叠促进蛋白 | 第27-29页 |
| 1.8. CURT1 (Curvature Thylakoid1)蛋白家族 | 第29-31页 |
| 2. 材料方法 | 第31-45页 |
| 2.1. 植物及生长条件 | 第31页 |
| 2.2. 基因型分析 | 第31-32页 |
| 2.3. RNA提取及cDNA合成 | 第32-33页 |
| 2.4. 农杆菌穿梭质粒的构建及突变株curt1a,curt1b和curt1abc的回补 | 第33-34页 |
| 2.4.1. 回补curt1a突变株的质粒构建 | 第33-34页 |
| 2.4.2. 回补curt1b突变株的质粒构建 | 第34页 |
| 2.4.3. 回补curt1abc突变株的质粒构建 | 第34页 |
| 2.5. 农杆菌介导转化植物 | 第34-35页 |
| 2.6. 光合参数测量 | 第35页 |
| 2.7. 光抑制研究(D1修复速率分析) | 第35-36页 |
| 2.8. 叶绿体和类囊体的提取 | 第36页 |
| 2.9. SDS电泳和Western blot | 第36-45页 |
| 2.10. 蓝色活性电泳(Blue-Native)和第二向电泳(2-D PAGE) | 第37-38页 |
| 2.11. 蛋白定量 | 第38页 |
| 2.12. 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,CoIP) | 第38页 |
| 2.13. 免疫胶体金标记(Immunogold labeling) | 第38-39页 |
| 2.14. 扫描电镜(SEM)和透射电镜(TEM)分析 | 第39-45页 |
| 3. 结果 | 第45-71页 |
| 3.1. 过表达植株oeCURT1A和四突变植株curt1abcd的性质研究 | 第45-55页 |
| 3.1.1. CURT1A蛋白在过表达植株oeCURT1A中主要分布于基粒边缘 | 第45-46页 |
| 3.1.2. 过表达植株oeCURT1A和四突变植株curt1abcd在不同光照条件下生长迟缓 | 第46-48页 |
| 3.1.3. CURT1A的表达水平对光合作用有多效性影响 | 第48-50页 |
| 3.1.4. CURT1A蛋白过表达未影响类囊体主要蛋白复合体的组装 | 第50-52页 |
| 3.1.5. 生长光照条件下过表达植株oeCURT1A表现出更显著的状态2 | 第52页 |
| 3.1.6. CURT1蛋白水平在黑暗,生长光照和高光照条件下保持稳定 | 第52-53页 |
| 3.1.7. 高光照条件下D1修复过程在过表达植株oeCURT1A中正常,在四突变植株curt1abcd有轻微影响 | 第53-55页 |
| 3.2. 基粒结构受(Ⅰ) CURT1蛋白的剂量和(Ⅱ)类囊体蛋白的磷酸化两个因素控制 | 第55-59页 |
| 3.2.1. stn7和stn7 8突变植株中的CURT1A蛋白水平降低 | 第55-57页 |
| 3.2.2. 过表达植株oeCURT1A中的类囊体蛋白磷酸化比例没有明显变化 | 第57-58页 |
| 3.2.3. 四突变植株curt1abc tap38的基粒结构与三突变植株curt1abc相似 | 第58-59页 |
| 3.3. CURT1剂量调控基粒结构机制中CURT1A起主要作用 | 第59-64页 |
| 3.3.1. 过表达植株oeCURT1A中仅CURT1A蛋白的表达量提高 | 第59-60页 |
| 3.3.2. 三突变植株curt1abc中人工表达CURT1A可以重新形成基粒 | 第60-62页 |
| 3.3.3. 含有CURT1A的蛋白复合体在高光条件下解聚 | 第62-64页 |
| 3.4. CURT1蛋白磷酸化的影响:构建CURT1磷酸化位点缺失(phospho-siteexchange,PSE)回补植株 | 第64-66页 |
| 3.5. CURT1互作蛋白的研究 | 第66-69页 |
| 3.5.1. 不同光照条件下CURT1的多聚化不受STN8调控 | 第66-68页 |
| 3.5.2. 类囊体硫氰酸酶类似蛋白(Thylakoid Rhodanese-Like protein,TROL)不是CURT1复合体的稳定互作蛋白 | 第68-69页 |
| 3.6. CURT1蛋白的进化分析:集胞藻CURT1类似物(synCURT1)回补三突变植株curt1abc后未形成基粒 | 第69-71页 |
| 4. 讨论 | 第71-82页 |
| 4.1. 基粒是否是光合作用的必需结构? | 第71-75页 |
| 4.2. CURT1蛋白如何引起基粒形成? | 第75-78页 |
| 4.3. 基粒动态变化是如何实现的? | 第78-82页 |
| 5. 附录 | 第82-85页 |
| 6. 创新点总结 | 第85-87页 |
| 7. 参考文献 | 第87-99页 |
| 致谢 | 第99-101页 |
| 在读期间发表及待发表文章 | 第101-102页 |
| 附件 | 第102-115页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第115页 |
