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生物法制备丙烯酸的研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 文献综述第13-32页
    1.1 丙烯酸简介第13-17页
        1.1.1 丙烯酸的理化性质第13页
        1.1.2 丙烯酸的用途第13页
        1.1.3 丙烯酸的市场情况第13-14页
        1.1.4 丙烯酸的生产方法第14-17页
            1.1.4.1 丙烯氧化法第14-15页
            1.1.4.2 乙炔羰基化路线(REPPE法)第15-16页
            1.1.4.3 丙烯腈水解法第16页
            1.1.4.4 乙烯氧化羰基化合成法第16页
            1.1.4.5 氰乙醇法第16-17页
            1.1.4.6 乙烯酮法第17页
    1.2 微生物生产丙烯酸的研究进展第17-25页
        1.2.1 可产生丙烯酸的微生物第17页
        1.2.2 粪产碱杆菌中生产丙烯酸的代谢途径第17-18页
        1.2.3 红球菌中生产丙烯酸的代谢途径第18-19页
        1.2.4 丙酸梭菌中生产丙烯酸的代谢途径第19-25页
    1.3 基因文库技术分离目的基因第25-31页
        1.3.1 基因文库的类别第26-27页
        1.3.2 核基因组文库构建核基因组文库构建第27-28页
        1.3.3 利用PCR技术构建cDNA文库第28页
        1.3.4 应用差别杂交或扣除杂交法构建cDNA文库第28-29页
        1.3.5 人工染色体文库第29-31页
    1.4 存在的问题及展望第31页
    1.5 实验目的第31-32页
第二章 粪产碱杆菌基因文库的构建及二甲基巯基丙酸裂解酶(DMSPLYASE)的筛选第32-42页
    2.1 引言第32-33页
    2.2 材料和方法第33-34页
        2.2.1 菌株和质粒第33页
        2.2.2 培养基第33页
        2.2.3 试剂和仪器第33-34页
    2.3 实验方法第34-36页
        2.3.1 培养方法第34页
        2.3.2 ALCALIGENESFAECALIS基因组DNA的提取第34-35页
        2.3.3 DNASE Ⅰ酶切粪产碱杆菌基因组DNA第35页
        2.3.4 PET-22B质粒的提取第35页
        2.3.5 PET-22B质粒的酶切第35-36页
        2.3.6 PET-22B质粒5’的去磷酸化第36页
        2.3.7 粪产碱杆菌DNA文库的构建第36页
        2.3.8 阳性克隆的筛选第36页
    2.4 结果和讨论第36-40页
        2.4.1 粪产碱杆菌全基因组电泳第36-37页
        2.4.2 DNASE Ⅰ酶切条件的确定第37-38页
        2.4.3 PET-22B的酶切第38-39页
        2.4.4 粪产碱杆菌基因组DNA文库的构建第39页
        2.4.5 粪产碱杆菌DNA文库的筛选第39-40页
    2.5 小结第40-42页
第三章 红球菌酰胺酶基因在大肠杆菌的克隆和表达第42-62页
    3.1 引言第42页
    3.2 实验材料第42-43页
        3.2.1 菌株、质粒和引物第42-43页
        3.2.2 培养基第43页
        3.2.3 试剂和仪器第43页
    3.3 实验方法第43-54页
        3.3.1 培养方法第43-44页
        3.3.2 R.ERYTHROPOLI基因组DNA的提取第44-45页
        3.3.3 聚合酶链式反应扩增基因AMI第45页
        3.3.4 琼脂糖凝胶电泳鉴定和分离基因AMI第45-46页
        3.3.5 质粒PMD 18-T-AMI的构建第46-47页
        3.3.6 质粒PMD 18-T-AMI转化大肠杆菌第47-48页
            3.3.6.1 大肠杆菌感受态细胞的制备第47-48页
            3.3.6.2 连接产物的乙醇沉淀第48页
            3.3.6.3 重组质粒电击转化大肠杆菌第48页
        3.3.7 质粒PMD 18-T-AMI的鉴定第48-50页
            3.3.7.1 蓝白斑筛选阳性重组子第48-49页
            3.3.7.2 质粒的酶切鉴定第49页
            3.3.7.3 序列测定和分析第49-50页
        3.3.8 质粒PET-22B的酶切及去磷酸化第50页
        3.3.9 质粒PET-22B-AMI的构建第50-51页
        3.3.10 质粒PET-22B-AMI的鉴定第51-52页
            3.3.10.1 菌落PCR筛选阳性重组子第51页
            3.3.10.2 酶切鉴定第51-52页
            3.3.10.3 序列测定和分析第52页
        3.3.11 AMI基因在大肠杆菌的表达第52-54页
            3.3.11.1 聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定重组蛋白第52-53页
            3.3.11.2 诱导时间的选择第53页
            3.3.11.3 酰胺酶蛋白表达部位第53-54页
            3.3.11.4 诱导温度对酰胺酶活性的影响第54页
        3.3.12 酰胺酶最适酶活测定第54页
        3.3.13 酰胺酶表达量及比酶活的测定第54页
    3.4 结果和讨论第54-60页
        3.4.1 R.ERYTHROPOLI基因组DNA的提取第54-55页
        3.4.2 聚合酶链式反应扩增基因AMI第55-56页
        3.4.3 质粒PMD 18-T-AMI的鉴定第56页
            3,4.3.1 双酶切鉴定第56页
            3.4.3.2 序列测定和分析第56页
        3.4.4 质粒 pET-22b~anti 的鉴定第56-57页
            3.4.4.1 菌落PCR第56-57页
            3.4.4.2 双酶切鉴定第57页
            3.4.4.3 序列测定和分析第57页
        3.4.5 基因AMI在大肠杆菌的表达第57-58页
            3.4.5.1 诱导时间的选择第57-58页
        3.4.6 重组大肠杆菌中酰胺酶酶活的测定第58-59页
        3.4.7 大肠杆菌中表达的酰胺酶比活和表达量的测定第59-60页
    3.5 小结第60-62页
第四章 红球菌酰胺酶基因在枯草芽孢杆菌的克隆和表达第62-80页
    4.1 前言第62-63页
    4.2 材料和方法第63-64页
        4.2.1 菌种与质粒第63页
        4.2.2 试验试剂及仪器设备第63页
        4.2.3 培养基和溶液第63-64页
    4.3 试验方法第64-72页
        4.3.1 枯草芽孢杆菌基因组的提取第64-65页
        4.3.2 AMYE启动子信号肽的克隆第65-66页
        4.3.3 AMI基因的PCR扩增第66页
        4.3.4 AMYE启动子信号肽与AMI基因的连接第66-67页
        4.3.5 质粒PMD 18-T-AMYE-AMI的构建第67页
        4.3.6 序列测定和分析第67页
        4.3.7 质粒PGJ103-AMYE-AMI的构建和鉴定第67-69页
        4.3.8 枯草感受态细胞的制备第69页
        4.3.9 重组质粒电击转化枯草芽孢杆菌第69页
        4.3.10 酰胺酶在枯草芽孢杆菌中的表达第69-70页
        4.3.11 在AMYE启动子调控下,酰胺酶活性和表达量的测量第70页
        4.3.12 启动子对酰胺酶在枯草芽孢杆菌中表达的影响第70页
        4.3.13 蛋白质浓度测定第70-71页
        4.3.14 超滤第71页
        4.3.15 液相色谱测定产物浓度第71页
        4.3.16 酰胺酶转化率的测定第71-72页
        4.3.17 枯草芽孢杆菌中AMYE,SACB,APRE,DEGQ启动子的序列分析第72页
    4.4 结果和讨论第72-78页
        4.4.1 AMI基因,AMYE,SACB,P43,APRE和DEGQ启动子的克隆第72-73页
        4.4.2 重组表达载体的构建第73-74页
        4.4.3 酰胺酶在枯草芽孢杆菌中的表达第74-75页
        4.4.4 酰胺酶酶活最适条件的测定第75-76页
        4.4.5 不同宿主表达酰胺酶的比酶活和表达量第76-77页
        4.4.6 酰胺酶摩尔转化率的测定第77-78页
    4.5 小结第78-80页
五、乳酸辅酶A转移酶及乳酸辅酶A脱水酶在丙酸梭菌中的表达制备丙烯酸第80-90页
    5.1 前言第80页
    5.2 实验材料第80-81页
    5.3 实验方法第81-85页
        5.3.1 丙酸梭菌的厌氧培养第81页
        5.3.2 丙酸梭菌基因组的提取第81-82页
        5.3.3 丙酸梭菌中乳酸辅酶A转移酶及乳酸辅酶A脱水酶的克隆第82页
        5.3.4 PMD-18T测序鉴定第82-83页
        5.3.5 质粒PGJ103-LCDB-PCT的构建第83-84页
        5.3.6 丙酸梭菌的电转化第84页
        5.3.7 丙酸梭菌阳性克隆的厌氧发酵第84页
        5.3.8 丙烯酸的液相测定第84-85页
        5.3.9 PGJ103质粒在丙酸梭菌中稳定性的测定第85页
        5.3.10 质谱检测发酵产物第85页
    5.4 结果与讨论第85-88页
        5.4.1 丙酸梭菌基因组的提取第85页
        5.4.2 乳酸脱水酶的B亚基及乳酸CoA转移酶PCT基因的克隆第85页
        5.4.3 丙酸梭菌阳性克隆的厌氧发酵第85-87页
        5.4.4 PGJ103质粒在丙酸梭菌中稳定性的测定第87页
        5.4.5 质谱检测发酵产物第87-88页
    5.5 小结第88-90页
第六章 结论第90-92页
第七章 问题与建议第92-94页
参考文献第94-97页
附录第97-100页
致谢第100-101页
研究成果及发表的学术论文第101-102页
作者和导师简介第102-103页
附件第103-104页

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