| 第一章 文献综述 | 第8-26页 |
| 1.1 薰衣草及其组织培养 | 第8-10页 |
| 1.1.1 腋芽培养 | 第9页 |
| 1.1.2 实生苗子叶和下胚轴培养 | 第9-10页 |
| 1.1.3 实生苗叶片组织培养 | 第10页 |
| 1.2 血红蛋白基因 | 第10-22页 |
| 1.2.1 概述 | 第11页 |
| 1.2.2 透明颤菌（Vitreoscillasp.）及血红蛋白的研究进展 | 第11-17页 |
| 1.2.3 关于透明颤菌血红蛋白的应用 | 第17-22页 |
| 1.3 农杆菌（Agrobacteriumtumefaciens）介导法的研究 | 第22-25页 |
| 1.3.1 农杆菌转化植物的步骤 | 第22页 |
| 1.3.2 转化方法 | 第22-23页 |
| 1.3.3 影响农杆菌转化的主要因素 | 第23-25页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 第二章 薰衣草叶片再生体系的建立 | 第26-35页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26-27页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第26-27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.2.1 叶片不同消毒时间的效果 | 第27-28页 |
| 2.2.2 叶片不同部位的分化率 | 第28页 |
| 2.2.3 叶片的放置方式对叶片再生体系建立的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.4 叶片在不同培养基上的再生能力 | 第29-30页 |
| 2.2.5 不同培养基中的生根反应 | 第30-32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-35页 |
| 2.3.1 叶片的不同取材部位 | 第32页 |
| 2.3.2 大量元素对叶片分化的影响 | 第32页 |
| 2.3.3 叶片放置方式与分化 | 第32-33页 |
| 2.3.4 组织培养中的褐化现象 | 第33页 |
| 2.3.5 组织培养中的玻璃化现象 | 第33-35页 |
| 第三章 农杆菌介导薰衣草遗传转化体系的建立 | 第35-52页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第35-43页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第35-36页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第36-42页 |
| 3.1.3 实验方案 | 第42-43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-48页 |
| 3.2.1 植物表达载体的构建 | 第43-44页 |
| 3.2.2 最佳预培养时间的确定 | 第44页 |
| 3.2.3 菌液浓度对薰衣草叶柄分化率的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.4 浸染时间对薰衣草叶柄分化率的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.5 共培养时间的选择 | 第46页 |
| 3.2.6 卡那霉素基础抗性的测定 | 第46-47页 |
| 3.2.7 抑菌剂对农杆菌的抑制作用 | 第47-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-52页 |
| 3.3.1 不同类型的农杆菌菌株 | 第48-49页 |
| 3.3.2 除菌剂在农杆菌转化中的效应 | 第49页 |
| 3.3.3 农杆菌的去除对转化效率的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.4 乙酰丁香酮（AS） | 第50页 |
| 3.3.5 Kan选择压的确定 | 第50-52页 |
| 第四章 转基因植株的检测 | 第52-56页 |
| 4.1 材料与方法 | 第52-53页 |
| 4.1.1 材料 | 第52页 |
| 4.1.2 方法 | 第52-53页 |
| 4.2 转基因植株的检测 | 第53-55页 |
| 4.2.1 转基因苗抗性芽的获得 | 第53页 |
| 4.2.2 转基因苗抗性生根筛选培养 | 第53-54页 |
| 4.2.3 PCR 检测 | 第54-55页 |
| 4.3 讨论 | 第55-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 附录 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 作者简介 | 第68页 |
