| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-28页 |
| 1.1 电致化学发光 | 第9-12页 |
| 1.1.1 电致化学发光简介 | 第9页 |
| 1.1.2 电致化学发光分析的特点 | 第9-10页 |
| 1.1.3 电致化学发光体系的分类 | 第10-12页 |
| 1.2 金纳米材料及其在电致化学发光分析中的应用 | 第12-18页 |
| 1.2.1 金纳米粒子及其在ECL分析中的应用 | 第13-15页 |
| 1.2.2 金纳米簇及其在ECL分析中的应用 | 第15-18页 |
| 1.3 石墨相碳氮化合物（g-C_3N_4）及其在电致化学发光分析中的应用 | 第18-22页 |
| 1.3.1 g-C_3N_4概述 | 第18页 |
| 1.3.2 g-C_3N_4在电致化学发光中的应用 | 第18-22页 |
| 1.4 蛋白激酶 | 第22-26页 |
| 1.4.1 蛋白激酶概述 | 第22-23页 |
| 1.4.2 蛋白激酶的检测方法 | 第23-26页 |
| 1.5 本课题的提出 | 第26-28页 |
| 第2章 基于Au NCs对g-C_3N_4的ECL信号增强效应的PKA活性检测方法 | 第28-43页 |
| 2.1 前言 | 第28-30页 |
| 2.2 实验部分 | 第30-33页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.3 合成g-C_3N_4纳米片 | 第31页 |
| 2.2.4 合成红色荧光Au NCs | 第31-32页 |
| 2.2.5 ECL传感器的组装过程 | 第32页 |
| 2.2.6 PKA活性检测 | 第32页 |
| 2.2.7 制备细胞裂解液 | 第32-33页 |
| 2.3 结果与讨论部分 | 第33-42页 |
| 2.3.1 g-C_3N_4和Au NCs的表征 | 第33-34页 |
| 2.3.2 电极组装过程的CV及EIS表征 | 第34-35页 |
| 2.3.3 电极组装过程的ECL表征 | 第35-36页 |
| 2.3.4 ECL增强效应机理探讨 | 第36-38页 |
| 2.3.5 检测条件优化 | 第38-39页 |
| 2.3.6 ECL方法用于检测PKA活性 | 第39-40页 |
| 2.3.7 生物样品中PKA活性检测 | 第40页 |
| 2.3.8 传感器的稳定性与重现性 | 第40-41页 |
| 2.3.9 抑制剂筛选及检测 | 第41-42页 |
| 2.4 结论 | 第42-43页 |
| 第3章 基于Au NPs与g-C_3N_4之间的ECL-RET效应检测PKA活性 | 第43-55页 |
| 3.1 前言 | 第43-45页 |
| 3.2 实验部分 | 第45-47页 |
| 3.2.1 实验材料及试剂 | 第45页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第45-46页 |
| 3.2.3 合成Au NPs | 第46页 |
| 3.2.4 ECL传感器组装 | 第46页 |
| 3.2.5 ECL检测 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与讨论部分 | 第47-54页 |
| 3.3.1 g-C_3N_4和Au NPs的表征 | 第47页 |
| 3.3.2 传感器构建过程的EIS和CV表征 | 第47-48页 |
| 3.3.3 传感器的ECL表征 | 第48-49页 |
| 3.3.4 ECL机理解释 | 第49-51页 |
| 3.3.5 检测PKA活性 | 第51-52页 |
| 3.3.6 激酶抑制剂的分析检测 | 第52-53页 |
| 3.3.7 稳定性和重现性考察 | 第53-54页 |
| 3.4 结论 | 第54-55页 |
| 总结与展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-67页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第67页 |
