| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-14页 |
| 符号与缩略语 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-35页 |
| 1.1 ATP概述 | 第15-16页 |
| 1.2 生物法合成ATP的反应机理 | 第16-18页 |
| 1.2.1 酵母菌转化腺苷合成ATP的机理 | 第16页 |
| 1.2.2 产氨短杆菌转化腺嘌呤合成ATP的机理 | 第16-18页 |
| 1.3 生物法合成ATP的研究进展 | 第18-22页 |
| 1.3.1 微生物发酵法 | 第18页 |
| 1.3.2 微生物酶系合成法 | 第18-21页 |
| 1.3.3 构建基因工程菌法 | 第21页 |
| 1.3.4 ATP生物合成法的比较 | 第21-22页 |
| 1.4 ATP分析测定方法 | 第22-23页 |
| 1.4.1 纸电泳法 | 第22页 |
| 1.4.2 纸层析法 | 第22页 |
| 1.4.3 琼脂糖凝胶电泳法 | 第22-23页 |
| 1.4.4 高效液相色谱法 | 第23页 |
| 1.4.5 ATP分析测定方法的比较 | 第23页 |
| 1.5 ATP分离提取方法 | 第23-26页 |
| 1.5.1 重金属沉淀法 | 第24页 |
| 1.5.2 离子交换法 | 第24-25页 |
| 1.5.3 ATP分离提取方法的比较 | 第25-26页 |
| 1.6 ATP的应用 | 第26-27页 |
| 1.6.1 医药方面 | 第26页 |
| 1.6.2 环境保护方面 | 第26-27页 |
| 1.6.3 微生物检验方面 | 第27页 |
| 1.7 前景与展望 | 第27-28页 |
| 1.8 选题意义、技术路线、研究内容及目标 | 第28-30页 |
| 1.8.1 选题意义 | 第28-29页 |
| 1.8.2 技术路线 | 第29页 |
| 1.8.3 研究内容 | 第29-30页 |
| 1.8.4 研究目标 | 第30页 |
| 参考文献 | 第30-35页 |
| 第二章 响应面法优化毛霉菌培养条件及培养基 | 第35-54页 |
| 2.1 前言 | 第35-36页 |
| 2.2 材料与方法 | 第36-38页 |
| 2.2.1 药品与仪器 | 第36页 |
| 2.2.2 菌种 | 第36页 |
| 2.2.3 培养基 | 第36-37页 |
| 2.2.4 菌体培养、收集及称重 | 第37页 |
| 2.2.5 转化反应 | 第37页 |
| 2.2.6 产物分析及计算 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-52页 |
| 2.3.1 温度对菌体培养的影响 | 第38页 |
| 2.3.2 摇床转速对菌体培养的影响 | 第38页 |
| 2.3.3 培养时间对菌体培养的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.4 碳源种类的筛选 | 第40页 |
| 2.3.5 氮源种类的筛选 | 第40-42页 |
| 2.3.6 Plackett-Burman试验设计 | 第42-44页 |
| 2.3.7 最陡爬坡试验 | 第44-45页 |
| 2.3.8 响应面优化菌体培养基 | 第45-48页 |
| 2.3.9 响应面交互作用分析与优化 | 第48-52页 |
| 2.3.10 验证试验 | 第52页 |
| 2.4 本章小结 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 第三章 腺嘌呤合成ATP的初始反应体系的研究 | 第54-65页 |
| 3.1 前言 | 第54页 |
| 3.2 材料与方法 | 第54-55页 |
| 3.2.1 药品、仪器、菌种 | 第54-55页 |
| 3.2.2 培养基 | 第55页 |
| 3.2.3 菌体培养及收集、转化反应、产物分析及计算 | 第55页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第55-63页 |
| 3.3.1 反应温度对ATP产量的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.2 初始反应pH对ATP产量的影响 | 第56页 |
| 3.3.3 反应时间对ATP产量的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.4 磷酸盐种类的筛选 | 第57页 |
| 3.3.5 Na_2HPO_4·12H_2O用量对ATP产量的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.6 镁盐、锰盐种类的筛选 | 第58-59页 |
| 3.3.7 MgCl_2·6H_2O用量对ATP产量的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.8 MnCl_2·4H_2O用量对ATP产量的影响 | 第60-61页 |
| 3.3.9 二甲苯加入时间对ATP产量的影响 | 第61页 |
| 3.3.10 反应液静置时间对转化反应的影响 | 第61-62页 |
| 3.3.11 正交试验优化反应液配方 | 第62页 |
| 3.3.12 验证试验 | 第62-63页 |
| 3.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
| 第四章 菌体通透性对腺嘌呤合成ATP的影响 | 第65-81页 |
| 4.1 前言 | 第65-66页 |
| 4.2 材料与方法 | 第66-69页 |
| 4.2.1 药品与仪器 | 第66页 |
| 4.2.2 菌种、培养基、菌体培养及收集 | 第66页 |
| 4.2.3 转化反应 | 第66页 |
| 4.2.4 产物分析及计算 | 第66-67页 |
| 4.2.5 物理方法的筛选 | 第67-68页 |
| 4.2.6 化学方法的筛选 | 第68页 |
| 4.2.7 电导率法考察菌体通透性 | 第68-69页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第69-78页 |
| 4.3.1 物理方法的筛选 | 第69-72页 |
| 4.3.2 化学方法的筛选 | 第72-77页 |
| 4.3.3 电导率法考察菌体通透性 | 第77-78页 |
| 4.4 本章小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 第五章 腺嘌呤合成ATP的补料反应体系初探 | 第81-98页 |
| 5.1 前言 | 第81-82页 |
| 5.2 材料与方法 | 第82-85页 |
| 5.2.1 药品与仪器、菌种、培养基、菌体培养 | 第82页 |
| 5.2.2 菌体收集及干燥处理 | 第82页 |
| 5.2.3 转化反应 | 第82页 |
| 5.2.4 产物分析及计算 | 第82-83页 |
| 5.2.5 葡萄糖含量的测定 | 第83-84页 |
| 5.2.6 Na_2HPO_4·12H_2O含量的测定 | 第84页 |
| 5.2.7 MgCl_2·6H_2O含量的测定 | 第84-85页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第85-96页 |
| 5.3.1 菌体含水量的初步研究 | 第85-87页 |
| 5.3.2 菌体用量对转化反应的影响 | 第87-88页 |
| 5.3.3 最适反应pH的确定 | 第88页 |
| 5.3.4 葡萄糖最适浓度的确定 | 第88-89页 |
| 5.3.5 分批加入Na_2HPO_4·12H_2O对转化反应的影响 | 第89-90页 |
| 5.3.6 磷标准曲线的制作 | 第90-91页 |
| 5.3.7 Na_2HPO_4·12H_2O最适浓度的确定 | 第91-92页 |
| 5.3.8 MgCl_2·6H_2O最适浓度的确定 | 第92-93页 |
| 5.3.9 补料反应体系初探 | 第93-95页 |
| 5.3.10 腺嘌呤用量对转化反应的影响 | 第95-96页 |
| 5.4 本章小结 | 第96页 |
| 参考文献 | 第96-98页 |
| 第六章 总结与展望 | 第98-100页 |
| 6.1 总结 | 第98-99页 |
| 6.2 展望 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 攻读硕士学位期间主要科研成果 | 第101页 |
