| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 前言 | 第11-26页 |
| 1 微生态制剂的研究进展 | 第11-18页 |
| 1.1 微生态制剂的定义与分类 | 第11-14页 |
| 1.1.1 益生素 | 第11-12页 |
| 1.1.2 益生元 | 第12-13页 |
| 1.1.3 合生元 | 第13-14页 |
| 1.2 微生态制剂的作用机制 | 第14-16页 |
| 1.2.1 过氧化氢 | 第14页 |
| 1.2.2 细菌素 | 第14-15页 |
| 1.2.3 有机酸类 | 第15页 |
| 1.2.4 营养物质和消化酶类 | 第15-16页 |
| 1.2.5 益生菌 | 第16页 |
| 1.3 动物微生态制剂在养殖业上的应用 | 第16-18页 |
| 2 动物微生态制剂的制备方法 | 第18-22页 |
| 2.1 常用的保护剂 | 第18-19页 |
| 2.2 常用的制备方法 | 第19-22页 |
| 2.2.1 冷冻干燥技术 | 第19-20页 |
| 2.2.2 喷雾干燥技术 | 第20-22页 |
| 3 动物肠道微生物菌群的检测方法 | 第22-25页 |
| 3.1 传统的分离培养方法 | 第22页 |
| 3.2 基于分子杂交技术的分子标记法 | 第22-24页 |
| 3.2.1 荧光原位杂交法 | 第22-23页 |
| 3.2.2 实时荧光定量PCR法 | 第23页 |
| 3.2.3 基因芯片技术法 | 第23-24页 |
| 3.3 基于DNA指纹图谱的分析方法 | 第24-25页 |
| 4.本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 第一章 禽用微生态制剂的制备 | 第26-38页 |
| 1 试验材料 | 第26-27页 |
| 1.1 菌种 | 第26页 |
| 1.2 培养基 | 第26页 |
| 1.3 仪器与试剂 | 第26-27页 |
| 2 试验方法 | 第27-30页 |
| 2.1 技术路线 | 第27页 |
| 2.2 基础保护剂的筛选 | 第27-28页 |
| 2.3 最佳复合保护剂的筛选 | 第28-29页 |
| 2.3.1 乳酸菌的复苏与培养 | 第28页 |
| 2.3.2 复合保护剂菌粉的制备 | 第28-29页 |
| 2.3.3 不同复合保护剂的胃酸耐受性试验 | 第29页 |
| 2.3.4 不同复合保护剂的肠溶释放性试验 | 第29页 |
| 2.3.5 不同复合保护剂的吸潮性试验 | 第29页 |
| 2.4 微生态制剂的保存期检测 | 第29页 |
| 2.5 统计分析 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-36页 |
| 3.1 基础保护剂对乳酸菌冷冻干燥存活率的影响 | 第30-31页 |
| 3.2 最佳复合保护剂的筛选结果 | 第31-35页 |
| 3.2.1 基础保护剂和辅助保护剂的组合 | 第31页 |
| 3.2.2 不同复合保护剂对乳酸菌冷冻干燥存活量的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.3 不同复合保护剂在模拟胃液中对乳酸菌的保护效果 | 第32-33页 |
| 3.2.4 不同复合保护剂中乳酸菌在模拟肠液中释放性的比较结果 | 第33-34页 |
| 3.2.5 不同复合保护剂的吸潮性 | 第34页 |
| 3.2.6 最佳复合保护剂的确定 | 第34-35页 |
| 3.3 微生态制剂的形态外观 | 第35页 |
| 3.4 微生态制剂在不同温度下的保存期 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| 第二章 禽类微生态制剂功能研究 | 第38-60页 |
| 1 材料 | 第38-40页 |
| 1.1 微生态制剂及菌种 | 第38页 |
| 1.2 实验动物及饲料 | 第38页 |
| 1.3 培养基及试剂 | 第38-39页 |
| 1.4 仪器及设备 | 第39-40页 |
| 2 方法 | 第40-45页 |
| 2.1 微生态制剂对鸡免疫功能及生长性能的影响 | 第40-41页 |
| 2.1.1 生长性能的测定 | 第40页 |
| 2.1.2 免疫器官指数的检测 | 第40页 |
| 2.1.3 肠道黏膜形态的检测 | 第40-41页 |
| 2.2 空肠弯曲杆菌和沙门氏菌Real-time PCR标准曲线的建立 | 第41-43页 |
| 2.2.1 定量PCR引物 | 第41页 |
| 2.2.2 细菌的复苏及培养 | 第41页 |
| 2.2.3 细菌DNA模板的制备 | 第41页 |
| 2.2.4 细菌DNA的扩增及纯化 | 第41-42页 |
| 2.2.5 阳性重组质粒的制备 | 第42页 |
| 2.2.6 Real-time PCR标准曲线的建立 | 第42-43页 |
| 2.3 微生态制剂对鸡空肠弯曲杆菌病和沙门氏菌病的防治效果 | 第43-44页 |
| 2.3.1 空肠弯曲杆菌动物实验方案 | 第43页 |
| 2.3.2 鼠伤寒沙门氏菌动物实验方案 | 第43-44页 |
| 2.3.3 动物粪便微生物DNA的抽提 | 第44页 |
| 2.3.4 动物排放量的检测 | 第44页 |
| 2.4 统计分析 | 第44-45页 |
| 3 结果与分析 | 第45-55页 |
| 3.1 微生态制剂对鸡免疫功能及生长性能的影响 | 第45-48页 |
| 3.1.1 微生态制剂对鸡体重的影响 | 第45页 |
| 3.1.2 微生态制剂对鸡免疫器官的影响 | 第45-47页 |
| 3.1.3 微生态制剂对鸡肠道生长发育的影响 | 第47-48页 |
| 3.2 空肠弯曲杆菌和沙门氏菌Real-time PCR标准曲线建立 | 第48-51页 |
| 3.2.1 Real-time PCR最佳反应体系及程序的确定 | 第48-49页 |
| 3.2.2 Real-time PCR引物特异性 | 第49-50页 |
| 3.2.3 标准曲线的建立和直线回归方程的确定 | 第50-51页 |
| 3.3 微生态制剂对禽类空肠弯曲杆菌病和沙门氏菌病的防治效果 | 第51-55页 |
| 3.3.1 微生态制剂对空肠弯曲杆菌试验组动物体重的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.2 微生态制剂对空肠弯曲杆菌排放量的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.3 空肠弯曲杆试验组各组动物临床状态观察结果 | 第53页 |
| 3.3.4 微生态制剂对沙门氏菌试验组动物体重的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.5 微生态制剂对沙门氏菌排放量的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.6 沙门氏菌试验组各组动物临床状态观察结果 | 第55页 |
| 4 讨论 | 第55-60页 |
| 4.1 微生态制剂对鸡免疫功能及生长性能的影响 | 第55-57页 |
| 4.2 空肠弯曲杆菌和沙门氏菌Real-time PCR检测 | 第57页 |
| 4.3 微生态制剂防治禽类空肠弯曲杆菌病和沙门氏菌病 | 第57-60页 |
| 全文总结 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
