| 前言 | 第4-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-16页 |
| 英汉缩略词名词对照 | 第18-21页 |
| 文献综述 | 第21-34页 |
| 第一部分ICR新生乳鼠皮质神经元的培养鉴定及细胞癫痫模型的建立 | 第34-50页 |
| 1 引言 | 第34页 |
| 2 材料及主要溶液的配制 | 第34-37页 |
| 3 实验方法 | 第37-42页 |
| 3.1 ICR新生乳鼠原代皮质神经元的培养及鉴定 | 第37-40页 |
| 3.2 神经元癫痫模型的建立及鉴定 | 第40-41页 |
| 3.3 优化ROCK 2 抑制剂Y-27632 浓度 | 第41-42页 |
| 3.4 神经元动作电位的记录 | 第42页 |
| 4 实验结果 | 第42-47页 |
| 4.1 皮质神经元的形态学观察结果 | 第42-43页 |
| 4.2 皮质神经元鉴定结果 | 第43-44页 |
| 4.3 不同浓度匹鲁卡品对皮质神经元形态变化的影响 | 第44页 |
| 4.4 不同浓度匹鲁卡品对皮质神经元F-actin分布的影响 | 第44-45页 |
| 4.5 不同浓度的Y-27632 对癫痫神经元形态学的影响 | 第45-46页 |
| 4.6 神经元动作电位检测结果 | 第46-47页 |
| 5 讨论 | 第47-50页 |
| 第二部分 匹鲁卡品诱导的癫痫神经元中树突棘密度及树突棘素表达水平的改变 | 第50-63页 |
| 1 引言 | 第50页 |
| 2 材料及主要溶液的配制 | 第50-52页 |
| 3 实验方法 | 第52-56页 |
| 3.1 实验分组 | 第52页 |
| 3.2 荧光染色观察神经元树突棘数量变化 | 第52-53页 |
| 3.3 免疫细胞化学染色 | 第53页 |
| 3.4 Western-blot检测Spinophilin蛋白水平变化 | 第53-56页 |
| 3.5 统计学分析 | 第56页 |
| 4 实验结果 | 第56-60页 |
| 4.1 各组神经元F-actin免疫染色后树突棘密度的改变 | 第56-58页 |
| 4.2 神经元树突棘素(Spinophilin)免疫细胞化学染色结果 | 第58-59页 |
| 4.3 免疫印迹实验检测树突棘素(Spinophilin)蛋白表达水平 | 第59-60页 |
| 5 讨论 | 第60-63页 |
| 第三部分 匹鲁卡品诱导的癫痫神经元中Calponin3、ROCK2 及pho-ROCK2蛋白分布及表达改变 | 第63-75页 |
| 1 引言 | 第63页 |
| 2 材料及仪器 | 第63-64页 |
| 3 实验方法 | 第64-66页 |
| 3.1 实验分组 | 第64-65页 |
| 3.2 免疫细胞化学染色 | 第65页 |
| 3.3 Western-blot蛋白表达水平的检测 | 第65页 |
| 3.4 统计学分析 | 第65-66页 |
| 4 实验结果 | 第66-71页 |
| 4.1 各组神经元中ROCK2 蛋白的分布及表达 | 第66页 |
| 4.2 各组神经元中Calponin 3 蛋白的分布及表达 | 第66-67页 |
| 4.3 免疫印迹实验检测Calponin 3、ROCK2 和pho-ROCK2 蛋白表达水平 | 第67-71页 |
| 5 讨论 | 第71-75页 |
| 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
| 研究生期间取得的科研成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
