文蛤SNP位点的开发和酪氨酸酶基因的克隆及表达分析
| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-21页 |
| 1.1 文蛤养殖生物学概要 | 第9-11页 |
| 1.1.1 文蛤的生物学特性 | 第9页 |
| 1.1.2 文蛤的养殖现状 | 第9-10页 |
| 1.1.3 文蛤分子标记和功能基因的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.2 分子标记技术的发展 | 第11-14页 |
| 1.2.1 第一代分子标记技术 | 第11-12页 |
| 1.2.2 第二代分子标记技术 | 第12-13页 |
| 1.2.3 第三代分子标记 | 第13-14页 |
| 1.3 SNP分型的检测方法 | 第14-18页 |
| 1.3.1 以凝胶电泳为基础的传统经典的检测方法 | 第14-16页 |
| 1.3.2 高通量、自动化程度较高的检测方法 | 第16-18页 |
| 1.4 SNP在水产动物中的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 酪氨酸酶基因克隆的研究 | 第19-20页 |
| 1.6 研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 第2章 文蛤EST-SNP标记的开发 | 第21-43页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-25页 |
| 2.1.1 DNA的提取 | 第21-22页 |
| 2.1.2 候选SNP位点的筛选 | 第22页 |
| 2.1.3 引物的设计和筛选 | 第22-23页 |
| 2.1.4 8%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳制作 | 第23页 |
| 2.1.5 高分辨率溶解曲线 | 第23-24页 |
| 2.1.6 基因分型及数据分析 | 第24-25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.2.1 DNA提取结果 | 第25页 |
| 2.2.2 引物筛选结果 | 第25页 |
| 2.2.3 SNPs分型结果 | 第25-27页 |
| 2.2.4 SNPs类型 | 第27页 |
| 2.2.5 SNP位点的多态性分析 | 第27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-29页 |
| 2.3.1 SNP分型分析 | 第27-28页 |
| 2.3.2 SNP类型比较 | 第28页 |
| 2.3.3 候选SNP位点遗传多样性分析 | 第28-29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-43页 |
| 第3章 文蛤酪氨酸酶基因的克隆及表达分析 | 第43-64页 |
| 3.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 3.1.1 文蛤材料 | 第43页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 3.1.3 引物序列 | 第43-44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-54页 |
| 3.2.1 TYR基因cDNA全长的克隆 | 第44-50页 |
| 3.2.2 TYR基因内含子的克隆 | 第50-51页 |
| 3.2.3 TYR基因不同壳色表达差异性分析 | 第51-54页 |
| 3.3 结果与分析 | 第54-62页 |
| 3.3.1 TYR蛋白生物学信息分析 | 第54-61页 |
| 3.3.2 TYR基因内含子克隆的分析 | 第61页 |
| 3.3.3 Tyr基因在文蛤不同壳色表达的差异性 | 第61-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-63页 |
| 3.4.1 Tyr基因序列分析 | 第62-63页 |
| 3.4.2 Tyr基因表达差异性分析 | 第63页 |
| 3.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第4章 总结与展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第72-73页 |
