| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 绪论 | 第12-21页 |
| 第一章：大鼠大脑中动脉栓塞模型后侧枝循环的开放使咀嚼肌不受损伤 | 第21-44页 |
| 1.1 引言 | 第21页 |
| 1.2 材料与方法 | 第21-33页 |
| 1.2.1 大脑中动脉阻塞模型制作相关材料和仪器 | 第21-22页 |
| 1.2.2 同步辐射脑血管造影相关材料、仪器和试剂 | 第22-23页 |
| 1.2.3 其他试剂和仪器 | 第23页 |
| 1.2.4 液体配置 | 第23-24页 |
| 1.2.5 实验方法 | 第24-33页 |
| 1.3 实验结果 | 第33-41页 |
| 1.3.1 永久性大脑中动脉阻塞术前术后脑血流、血压、心率和血气指标变化 | 第33-35页 |
| 1.3.2 体重受大脑中动脉阻塞手术的影响 | 第35页 |
| 1.3.3 大鼠永久性大脑中动脉阻塞术后水肿体积的变化 | 第35-37页 |
| 1.3.4 大脑中动脉阻塞后咀嚼肌未损伤 | 第37-38页 |
| 1.3.5 正常和线栓法大脑中动脉阻塞后的大鼠同步辐射脑血管造影图及其解剖结构 | 第38-40页 |
| 1.3.6 翼腭动脉和颌外动脉的侧枝循环在颈外动脉切断后可以维持颈外动脉的血供 | 第40-41页 |
| 1.4 讨论 | 第41-42页 |
| 1.5 本章小结 | 第42-44页 |
| 第二章：翼腭动脉结扎与线栓法大脑中动脉阻塞模型稳定性的相关性 | 第44-60页 |
| 2.1 引言 | 第44-45页 |
| 2.2 材料与方法 | 第45-48页 |
| 2.2.1 大脑中动脉阻塞模型制作相关材料和仪器 | 第45页 |
| 2.2.2 同步辐射脑血管造影相关材料、仪器和试剂 | 第45页 |
| 2.2.3 其他试剂和仪器 | 第45页 |
| 2.2.4 液体配置 | 第45页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第45-48页 |
| 2.3 实验结果 | 第48-56页 |
| 2.3.1 永久性大脑中动脉阻塞和短暂性大脑中动脉阻塞术前术后脑血流、血压、心率和血气指标变化 | 第48-52页 |
| 2.3.2 大鼠短暂性大脑中动脉阻塞后颅内外的侧枝循环 | 第52-54页 |
| 2.3.3 大鼠永久性大脑中动脉阻塞后颅内外的侧枝循环 | 第54-55页 |
| 2.3.4 亚甲基蓝在永久性大脑中动脉阻塞后大鼠头部的分布 | 第55-56页 |
| 2.3.5 大鼠永久性大脑中动脉阻塞伴随翼腭动脉结扎后梗死体积的变化 | 第56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-58页 |
| 2.5 本章小结 | 第58-60页 |
| 第三章：手术诱发的血栓形成与小鼠线栓法短暂性大脑中动脉阻塞模型稳定性的相关性 | 第60-74页 |
| 3.1 引言 | 第60页 |
| 3.2 材料与方法 | 第60-65页 |
| 3.2.1 短暂性大脑中动脉阻塞模型制作相关材料和仪器 | 第60页 |
| 3.2.2 同步辐射脑血管造影相关材料、仪器和试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.3 激光散斑成像相关材料和仪器 | 第61页 |
| 3.2.4 其他试剂和仪器 | 第61页 |
| 3.2.5 液体配置 | 第61页 |
| 3.2.6 实验方法 | 第61-65页 |
| 3.3 实验结果 | 第65-72页 |
| 3.3.1 小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后同步辐射脑血管造影和激光散斑成像结果 | 第65-66页 |
| 3.3.2 再灌注失败的动物中存在血管内血栓形成 | 第66-68页 |
| 3.3.3 血栓形成是影响小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后再灌注失败和模型稳定性的主要因素 | 第68-69页 |
| 3.3.4 血栓形成影响了再灌注后的皮层侧枝循环 | 第69-70页 |
| 3.3.5 血栓形成影响小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后的梗死体积和神经功能评分 | 第70-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-73页 |
| 3.5 本章小结 | 第73-74页 |
| 第四章：基于同步辐射造影的活体脑微血管功能性成像 | 第74-86页 |
| 4.1 引言 | 第74页 |
| 4.2 材料与方法 | 第74-78页 |
| 4.2.1 短暂性大脑中动脉阻塞模型制作相关材料和仪器 | 第74-75页 |
| 4.2.2 同步辐射脑血管造影相关材料、仪器和试剂 | 第75页 |
| 4.2.3 液体配置 | 第75页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第75-78页 |
| 4.3 实验结果 | 第78-83页 |
| 4.3.1 应用功能性同步辐射脑血管造影方法计算的PE管和大脑中动脉分支的血管弹性比较 | 第78-79页 |
| 4.3.2 短暂性大脑中动脉阻塞后豆纹动脉的弹性变化 | 第79-80页 |
| 4.3.3 短暂性大脑中动脉阻塞后豆纹动脉的弹性变化与脑水肿变化呈正相关 | 第80-81页 |
| 4.3.4 短暂性大脑中动脉阻塞后豆纹动脉的弹性变化与血流速度变化成反比 | 第81-82页 |
| 4.3.5 短暂性大脑中动脉阻塞后豆纹动脉的直径没有显著变化 | 第82-83页 |
| 4.4 讨论 | 第83-84页 |
| 4.5 本章小结 | 第84-86页 |
| 第五章：雷帕霉素通过增加颅内侧枝的开放改善啮齿类动物卒中的预后 | 第86-108页 |
| 5.1 引言 | 第86-87页 |
| 5.2 材料与方法 | 第87-93页 |
| 5.2.1 血栓性大脑中动脉阻塞（eMCAO）模型制作相关材料和仪器 | 第87页 |
| 5.2.2 激光散斑成像相关材料和仪器 | 第87页 |
| 5.2.3 Micro-CT成像相关材料和仪器 | 第87页 |
| 5.2.4 其他试剂和仪器 | 第87-88页 |
| 5.2.5 液体配置 | 第88页 |
| 5.2.6 实验方法 | 第88-93页 |
| 5.3 实验结果 | 第93-105页 |
| 5.3.1 雷帕霉素能减小小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后的梗死体积并保护神经功能 | 第93-94页 |
| 5.3.2 雷帕霉素能维持小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后脑表面软脑膜侧枝动脉的开放 | 第94-96页 |
| 5.3.3 雷帕霉素能增加小鼠短暂性大脑中动脉阻塞后脑表面软脑膜侧枝动脉的血流速度 | 第96页 |
| 5.3.4 大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后脑血流的变化及模型成功的鉴定 | 第96-98页 |
| 5.3.5 大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后存在大脑后动脉-大脑中动脉侧枝动脉的开放 | 第98-101页 |
| 5.3.6 雷帕霉素对大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后存在大脑后动脉-大脑中动脉侧枝动脉的开放率无影响 | 第101页 |
| 5.3.7 雷帕霉素能增加大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后存在大脑后动脉-大脑中动脉侧枝动脉的直径 | 第101-103页 |
| 5.3.8 雷帕霉素能增加大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后大脑中动脉区域的血液灌注 | 第103-104页 |
| 5.3.9 雷帕霉素不影响大鼠血栓性大脑中动脉阻塞后大脑中动脉区域的血管弹性 | 第104-105页 |
| 5.4 讨论 | 第105-106页 |
| 5.5 本章小结 | 第106-108页 |
| 全文总结 | 第108-109页 |
| 研究展望 | 第109-110页 |
| 附录 1：同步辐射脑血管造影时间减影的MatLab程序源代码 | 第110-111页 |
| 附录 2：功能性同步辐射脑血管造影提取血管骨架的MatLab程序源代码 | 第111-115页 |
| 附录 3：功能性同步辐射脑血管造影提取计算血管弹性和相对血流速度的Mat Lab程序源代码 | 第115-117页 |
| 附录 4：功能性同步辐射脑血管造影添加伪彩的MatLab程序源代码 | 第117-119页 |
| 附录 5：同步辐射脑血管造影图计算血管密度的MatLab程序源代码 | 第119-123页 |
| 附录 6：小鼠神经行为学评分细则（14分评分标准） | 第123-124页 |
| 附录 7：中英文缩写字母表 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-140页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及书本章节 | 第140-142页 |
| 致谢 | 第142-144页 |
