农杆菌介导抗旱耐盐基因Avp1、FNR-Fld、OsSiz1对商用大麦品种的遗传转化
| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略 语表 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-50页 |
| 1 引言 | 第13-15页 |
| 2 植物抗旱耐盐机制的研究进展 | 第15-28页 |
| 2.1 干旱和盐碱化 | 第15页 |
| 2.1.1 干旱 | 第15页 |
| 2.1.2 盐碱化 | 第15页 |
| 2.2 植物生理形态结构的抗旱耐盐 | 第15-17页 |
| 2.2.1 根 | 第16页 |
| 2.2.2 茎 | 第16页 |
| 2.2.3 叶 | 第16-17页 |
| 2.3 气孔调节 | 第17页 |
| 2.4 渗透调节 | 第17-21页 |
| 2.4.1 无机渗透调节机制 | 第17-18页 |
| 2.4.2 有机渗透调节机制 | 第18-21页 |
| 2.4.2.1 甜菜碱 | 第18-19页 |
| 2.4.2.2 脯氨酸（Pro） | 第19页 |
| 2.4.2.3 多元醇类 | 第19-20页 |
| 2.4.2.4 胺类 | 第20页 |
| 2.4.2.5 糖类 | 第20-21页 |
| 2.5 活性氧清除机制 | 第21-22页 |
| 2.6 离子区域化 | 第22-23页 |
| 2.7 蛋白调节 | 第23-25页 |
| 2.7.1 LEA蛋白 | 第23-24页 |
| 2.7.2 水通道蛋白（AQPs） | 第24页 |
| 2.7.3 调渗蛋白（OSM） | 第24-25页 |
| 2.7.4 热激蛋白（Hsp） | 第25页 |
| 2.8 激素调节 | 第25-26页 |
| 2.9 光合途径的改变 | 第26页 |
| 2.10 转录因子调节 | 第26-27页 |
| 2.11 小RNA与胁迫响应 | 第27-28页 |
| 3 Avp1、FNR-Fld、OsSiz1 基因 | 第28-37页 |
| 3.1 Avp1 基因 | 第28-31页 |
| 3.1.1 H~+-PPase的结构 | 第28-29页 |
| 3.1.2 H~+-PPase的功能 | 第29-30页 |
| 3.1.3 Avp1 基因研究进展 | 第30-31页 |
| 3.2 FNR-Fld基因 | 第31-33页 |
| 3.2.1 FNR | 第31页 |
| 3.2.2 Fld | 第31-32页 |
| 3.2.3 FNR-Fld基因研究进展 | 第32-33页 |
| 3.3 OsSiz1 基因 | 第33-37页 |
| 3.3.1 SUMO化 | 第33-36页 |
| 3.3.2 SUMO化的功能 | 第36页 |
| 3.3.3 OsSiz1 基因研究进展 | 第36-37页 |
| 4 大麦转基因研究进展 | 第37-48页 |
| 4.1 大麦转基因方法 | 第37-43页 |
| 4.1.1 农杆菌介导法 | 第38-41页 |
| 4.1.2 基因枪法 | 第41页 |
| 4.1.3 激光微束穿刺法 | 第41-42页 |
| 4.1.4 花粉管通道法 | 第42-43页 |
| 4.1.5 其他方法 | 第43页 |
| 4.2 转基因技术在大麦遗传改良中的应用 | 第43-48页 |
| 4.2.1 抗病害 | 第44-45页 |
| 4.2.2 抗逆性 | 第45-46页 |
| 4.2.3 营养品质改良和增产 | 第46页 |
| 4.2.4 麦芽品质 | 第46-47页 |
| 4.2.5 饲用酶 | 第47-48页 |
| 4.2.6 外源重组活性蛋白 | 第48页 |
| 5 大麦转基因存在的问题及对策 | 第48-49页 |
| 6 本研究的目的和意义 | 第49-50页 |
| 第二章 大麦组织培养和高效再生体系的建立与优化 | 第50-67页 |
| 1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 1.1 供试大麦材料 | 第50页 |
| 1.2 培养基 | 第50-51页 |
| 1.2.1 幼胚培养基 | 第50-51页 |
| 1.2.2 成熟胚培养基 | 第51页 |
| 1.3 方法 | 第51-53页 |
| 1.3.1 幼胚接种 | 第51-52页 |
| 1.3.2 成熟胚接种 | 第52-53页 |
| 1.3.3 分化培养 | 第53页 |
| 1.3.4 再生 | 第53页 |
| 1.3.5 春化和移栽 | 第53页 |
| 1.4 数据统计方法 | 第53-54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-63页 |
| 2.1 大麦愈伤组织的诱导和再生 | 第54-55页 |
| 2.2 ABA对大麦愈伤组织诱导的影响 | 第55-60页 |
| 2.2.1 ABA对大麦幼胚愈伤组织诱导的影响 | 第55-58页 |
| 2.2.2 ABA对大麦成熟胚愈伤组织诱导的影响 | 第58-60页 |
| 2.3 接种方式对大麦成熟胚愈伤组织诱导的影响 | 第60-61页 |
| 2.4 基因型对大麦愈伤组织诱导的影响 | 第61-63页 |
| 2.4.1 基因型对大麦幼胚愈伤组织诱导的影响 | 第61-62页 |
| 2.4.2 基因型对大麦成熟胚愈伤组织诱导的影响 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-67页 |
| 3.1 大麦愈伤组织的诱导和再生 | 第63-64页 |
| 3.2 ABA对大麦愈伤组织诱导的影响 | 第64-65页 |
| 3.3 接种方式对成熟胚愈伤组织诱导的影响 | 第65页 |
| 3.4 基因型大麦对愈伤组织形成的影响 | 第65-67页 |
| 第三章 农杆菌介导大麦幼胚的遗传转化 | 第67-80页 |
| 1 材料与方法 | 第67-72页 |
| 1.1 供试材料 | 第67页 |
| 1.2 培养基 | 第67-69页 |
| 1.3 转化载体 | 第69页 |
| 1.4 农杆菌介导大麦幼胚的转化方法 | 第69-71页 |
| 1.4.1 农杆菌活化和保存 | 第69页 |
| 1.4.2 幼胚接种 | 第69-70页 |
| 1.4.3 侵染和共培养 | 第70-71页 |
| 1.4.4 恢复培养 | 第71页 |
| 1.4.5 分化培养 | 第71页 |
| 1.4.6 再生 | 第71页 |
| 1.4.7 春化和移栽 | 第71页 |
| 1.5 数据统计方法 | 第71-72页 |
| 2 转基因T0代植株PCR检测 | 第72-75页 |
| 2.1 抗性再生苗DNA的提取 | 第72-73页 |
| 2.1.1 DNA提取的试剂 | 第72页 |
| 2.1.2 DNA提取的步骤 | 第72-73页 |
| 2.2 引物 | 第73页 |
| 2.3 电泳缓冲液 | 第73-74页 |
| 2.4 PCR检测体系 | 第74页 |
| 2.5 PCR反应条件 | 第74-75页 |
| 3 结果与分析 | 第75-78页 |
| 3.1 农杆菌介导大麦幼胚转基因植株的获得 | 第75-76页 |
| 3.2 大麦品种对幼胚遗传转化的影响 | 第76-78页 |
| 4 讨论 | 第78-80页 |
| 第四章 农杆菌介导大麦成熟胚的遗传转化 | 第80-89页 |
| 1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 1.1 供试材料 | 第80页 |
| 1.2 培养基 | 第80-81页 |
| 1.3 转化载体 | 第81页 |
| 1.4 农杆菌介导大麦的转化方法 | 第81-83页 |
| 1.4.1 农杆菌活化和保存 | 第81页 |
| 1.4.2 成熟胚接种 | 第81-82页 |
| 1.4.3 侵染和共培养 | 第82-83页 |
| 1.4.4 恢复培养 | 第83页 |
| 1.4.5 分化培养 | 第83页 |
| 1.4.6 再生 | 第83页 |
| 1.4.7 春化和移栽 | 第83页 |
| 1.5 数据统计方法 | 第83页 |
| 2 转基因T0代植株PCR检测 | 第83-84页 |
| 3 结果与分析 | 第84-87页 |
| 3.1 农杆菌介导大麦成熟胚转基因植株的获得 | 第84-86页 |
| 3.2 大麦品种对成熟胚遗传转化的影响 | 第86-87页 |
| 4 讨论 | 第87-89页 |
| 第五章 总结与展望 | 第89-92页 |
| 1 总结 | 第89-90页 |
| 2 展望 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-112页 |
| 附录 | 第112-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
