| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-20页 |
| 1.1 马立克氏病概述 | 第8-12页 |
| 1.2 miRNA研究概述 | 第12-17页 |
| 1.3 miR-200b研究概述 | 第17-20页 |
| 第2章 miR-200b-3p和miR-200b-5p在马立克氏病抗性与易感SPF鸡法氏囊组织的差异表达分析 | 第20-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验动物与毒株 | 第20页 |
| 2.1.2 主要仪器和试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 方法 | 第21-23页 |
| 2.1.4 数据分析 | 第23页 |
| 2.2 结果 | 第23-25页 |
| 2.2.1 抗性鸡和易感鸡法氏囊组织mi RNA差异表达谱的筛选 | 第23页 |
| 2.2.2 荧光定量PCR验证高通量测序结果 | 第23-25页 |
| 2.3 miR-200b-3p和miR-200b-5p在马立克氏病抗性与易感SPF鸡法氏囊组织的差异表达 | 第25-26页 |
| 2.4 小结 | 第26-28页 |
| 第3章 miR-200b-3p功能靶基因鉴定 | 第28-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-41页 |
| 3.1.1 主要仪器和试剂 | 第28-29页 |
| 3.1.2 方法 | 第29-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-47页 |
| 3.2.1 靶基因 | 第41-42页 |
| 3.2.2 靶基因 3’-UTR区扩增 | 第42页 |
| 3.2.3 野生型载体构建 | 第42页 |
| 3.2.4 靶基因野生型载体双荧光素酶活性 | 第42-44页 |
| 3.2.5 突变型载体构建 | 第44页 |
| 3.2.6 靶基因突变型载体双荧光素酶活性 | 第44-47页 |
| 3.2.7 Western blot分析 | 第47页 |
| 3.2.8 细胞增殖 | 第47页 |
| 3.3 miR-200b-3p在马立克氏病肿瘤形成过程中发挥的作用 | 第47-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 第4章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第57页 |