| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第12-20页 |
| 1 过氧化物酶体增殖物激活受体 | 第12-14页 |
| 1.1 核受体PPARγ与疾病的关系 | 第12页 |
| 1.2 核受体PPARγ的配体 | 第12-13页 |
| 1.3 核受体PPARγ药物筛选模型 | 第13-14页 |
| 1.3.1 分子生物学水平上的筛选 | 第13页 |
| 1.3.2 动物水平的筛选 | 第13页 |
| 1.3.3 虚拟筛选 | 第13页 |
| 1.3.4 放射性配体竞争结合法 | 第13页 |
| 1.3.5 生物色谱法 | 第13-14页 |
| 2 DNA折纸术 | 第14-19页 |
| 2.1 概念 | 第14-15页 |
| 2.2 DNA折纸术在生物领域的应用 | 第15-17页 |
| 2.2.1 DNA折纸用于药物输送 | 第15-16页 |
| 2.2.2 DNA折纸用于传感器 | 第16页 |
| 2.2.3 DNA折纸用于酶级联反应 | 第16-17页 |
| 2.3 DNA折纸术脚手架来源 | 第17-19页 |
| 2.3.1 天然基因组 | 第17页 |
| 2.3.2 非天然脚手架链 | 第17-19页 |
| 3 本论文的研究意义 | 第19-20页 |
| 第二章 M1.3 折纸组装核受体PPARγ生物色谱模型的构建 | 第20-41页 |
| 第一节 M1.3 折纸的制备 | 第21-30页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第21-24页 |
| 1.1 实验仪器 | 第21-22页 |
| 1.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 1.3 溶液配制 | 第23-24页 |
| 2 实验内容 | 第24-27页 |
| 2.1 M13mp18ssDNA的大量提取 | 第24-25页 |
| 2.2 脚手架链M1.3ssDNA的制备 | 第25-26页 |
| 2.3 M1.3 折纸的制备 | 第26-27页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第27-30页 |
| 3.1 大肠杆菌JM109感受态细胞制备 | 第27页 |
| 3.2 M13mp18ssDNA的提取 | 第27-28页 |
| 3.3 M1.3ssDNA的制备结果 | 第28-29页 |
| 3.4 折纸的制备 | 第29-30页 |
| 4 总结 | 第30页 |
| 第二节 hPPARγ-LBD重组蛋白的制备 | 第30-35页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第30-32页 |
| 1.1 实验仪器 | 第30页 |
| 1.2 实验试剂 | 第30-31页 |
| 1.3 溶液配制 | 第31-32页 |
| 2 实验内容 | 第32-34页 |
| 2.1 E.coli. BL21 (DE3)感受态的制备 | 第32页 |
| 2.2 hPPARγ-LBD重组质粒的转化 | 第32-33页 |
| 2.3 hPPARγ-LBD蛋白的制备 | 第33页 |
| 2.4 纯化重组蛋白的SDS-PAGE电泳分析 | 第33-34页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第34-35页 |
| 3.1 hPPARγ-LBD重组质粒的转化 | 第34页 |
| 3.2 重组蛋白hPPARγ-LBD的纯化 | 第34-35页 |
| 4 总结 | 第35页 |
| 第三节 M1.3 折纸组装hPPARγ-LBD色谱柱的制备 | 第35-41页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第36-37页 |
| 1.1 实验仪器 | 第36-37页 |
| 1.2 实验试剂 | 第37页 |
| 2 实验内容 | 第37-39页 |
| 2.1 巯基化硅胶的制备 | 第37-38页 |
| 2.2 M1.3 折纸组装PPARγ | 第38页 |
| 2.3 M1.3 折纸组装PPARγ生物色谱固定相的制备 | 第38页 |
| 2.4 M1.3 折纸生物色谱柱的装填 | 第38-39页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第39-40页 |
| 3.1 巯基化硅胶的表征 | 第39页 |
| 3.2 M1.3 折纸组装PPARγ的表征 | 第39-40页 |
| 4 总结 | 第40-41页 |
| 第三章 M1.3 折纸组装PPARγ生物色谱模型的评价 | 第41-46页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 1.1 实验仪器 | 第41页 |
| 1.2 实验试剂 | 第41-42页 |
| 1.3 溶液配制 | 第42页 |
| 2 实验内容 | 第42-43页 |
| 2.1 自制生物色谱柱的预处理 | 第42页 |
| 2.2 自制生物色谱柱的亲和性评价 | 第42页 |
| 2.3 自制生物色谱柱的选择性考察 | 第42-43页 |
| 2.4 自制生物色谱柱的稳定性研究 | 第43页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第43-45页 |
| 3.1 自制生物色谱柱的亲和性 | 第43-44页 |
| 3.2 自制生物色谱柱的选择性 | 第44页 |
| 3.3 自制生物色谱柱的稳定性 | 第44-45页 |
| 4 总结 | 第45-46页 |
| 第四章 M1.3 折纸组装PPARγ生物色谱模型的应用 | 第46-53页 |
| 1 实验仪器与试剂 | 第46-47页 |
| 1.1 实验仪器 | 第46页 |
| 1.2 实验试剂 | 第46-47页 |
| 1.3 溶液配制 | 第47页 |
| 2 实验内容 | 第47-49页 |
| 2.1 人参总皂苷活性成分的筛选 | 第47-48页 |
| 2.2 栀子活性成分的筛选 | 第48页 |
| 2.3 大黄有效成分的筛选 | 第48-49页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第49-52页 |
| 3.1 人参总皂苷活性成分的筛选 | 第49-50页 |
| 3.2 栀子活性成分的筛选 | 第50-52页 |
| 3.3 大黄在自制生物色谱柱上的分析结果 | 第52页 |
| 4 总结 | 第52-53页 |
| 全文总结 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 附录 | 第59-61页 |
| 个人简历 | 第61-62页 |
| 研究生期间发表文章 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
