| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表(Abbreviation) | 第12-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 STC-1 研究进展 | 第13-16页 |
| 1.1.1 斯钙素概述 | 第13页 |
| 1.1.2 斯钙素的结构与分布 | 第13-14页 |
| 1.1.3 斯钙素1的作用 | 第14-16页 |
| 1.2 镉毒性的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.1 镉对组织器官细胞的作用 | 第16-17页 |
| 1.2.2 解偶联蛋白家族与ROS的相关研究 | 第17-18页 |
| 1.2.3 Caspase家族研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.4 Bcl-2 家族研究进展 | 第19-20页 |
| 第2章 研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 第3章 材料和方法 | 第21-34页 |
| 3.1 试验材料 | 第21-25页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第21页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第21-22页 |
| 3.1.3 实验仪器和设备 | 第22-23页 |
| 3.1.4 溶液配制 | 第23-25页 |
| 3.2 试验方法 | 第25-34页 |
| 3.2.1 细胞的培养 | 第25页 |
| 3.2.2 细胞的冻存与复苏 | 第25页 |
| 3.2.3 Annexin-V FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第25-26页 |
| 3.2.4 细胞活性氧检测 | 第26-27页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR检测 | 第27-31页 |
| 3.2.6 Western-blot检测 | 第31-34页 |
| 第4章 结果与分析 | 第34-44页 |
| 4.1 MDBK牛肾细胞培养与镉处理的形态学变化 | 第34-35页 |
| 4.2 镉处理细胞STC-1 mRNA与蛋白表达变化 | 第35-38页 |
| 4.2.1 镉处理细胞STC-1 mRNA表达量变化 | 第35-37页 |
| 4.2.2 氯化镉对STC-1 蛋白表达的影响 | 第37-38页 |
| 4.3 h STC-1 重组蛋白对镉诱导细胞凋亡的影响 | 第38-44页 |
| 4.3.1 hSTC-1 重组蛋白对镉诱导细胞Caspase-3 基因表达的影响 | 第38-39页 |
| 4.3.2 hSTC-1 重组蛋白对镉诱导细胞Bcl-2 基因表达的影响 | 第39-40页 |
| 4.3.3 hSTC-1 重组蛋白对镉诱导细胞UCP-2 基因表达的影响 | 第40-41页 |
| 4.3.4 Annexin-V FITC/PI双染法检测hSTC-1 重组蛋白对镉诱导细胞凋亡情况的影响 | 第41-42页 |
| 4.3.5 流式细胞仪检测h STC-1 重组蛋白对镉诱导细胞ROS产生量的影响 | 第42-44页 |
| 第5章 讨论与结论 | 第44-47页 |
| 5.1 镉对STC-1 的上调作用 | 第44-45页 |
| 5.2 STC-1 对镉诱导细胞凋亡的抑制作用 | 第45-46页 |
| 5.2.1 凋亡基因Caspase-3 表达量变化 | 第45页 |
| 5.2.2 凋亡基因Bcl-2 表达量变化 | 第45-46页 |
| 5.2.3 凋亡基因UCP-2 表达量变化 | 第46页 |
| 5.2.4 流式细胞仪检测细胞凋亡与ROS产生量 | 第46页 |
| 5.3 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
