| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 第一篇 文献综述 | 第10-18页 |
| 第一章 花生青枯菌响应基因挖掘的研究概况 | 第10-16页 |
| 1.1 青枯菌研究概况 | 第10-12页 |
| 1.1.1 青枯菌的特征 | 第10页 |
| 1.1.2 青枯菌的基因组结构 | 第10-11页 |
| 1.1.3 青枯菌侵染方式 | 第11-12页 |
| 1.1.4 青枯菌的检测方法 | 第12页 |
| 1.2 花生青枯病的研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2.1 花生青枯病的特征 | 第12页 |
| 1.2.2 花生青枯病的分布与流行 | 第12-13页 |
| 1.2.3 花生青枯病的传播 | 第13页 |
| 1.2.4 花生青枯病的防治 | 第13页 |
| 1.3 花生青枯菌响应基因的研究概况 | 第13-16页 |
| 1.3.1 花生青枯病抗性机制 | 第13-14页 |
| 1.3.2 花生青枯病的抗性鉴定方法 | 第14页 |
| 1.3.3 花生青枯菌响应基因的研究 | 第14-16页 |
| 第二章 花生青枯病抗性品种（系）培育的研究概况 | 第16-18页 |
| 2.1 花生品种的抗性鉴定 | 第16页 |
| 2.2 花生抗性相关分子标记的研究 | 第16-17页 |
| 2.3 国内外的研究概况 | 第17-18页 |
| 第二篇 研究内容 | 第18-63页 |
| 第一章 花生核糖体蛋白L29-1（RPL29-1）基因克隆表达分析及载体构建 | 第18-30页 |
| 1.1 材料和方法 | 第18-23页 |
| 1.1.1 材料 | 第18-19页 |
| 1.1.2 方法 | 第19-23页 |
| 1.1.2.1 cDNA序列的获得 | 第19-21页 |
| 1.1.2.2 RPL29-1 基因DNA序列的获得 | 第21页 |
| 1.1.2.3 序列分析 | 第21页 |
| 1.1.2.4 RPL29-1 基因组织表达和胁迫表达情况 | 第21-22页 |
| 1.1.2.5 RPL29-1 基因的过表达及反义表达载体构建 | 第22-23页 |
| 1.1.2.6 RPL29-1 基因的原核表达载体构建 | 第23页 |
| 1.2 结果与分析 | 第23-29页 |
| 1.2.1 RPL29-1 基因cDNA序列的表征 | 第23-25页 |
| 1.2.2 RPL29-1 基因的DNA序列 | 第25页 |
| 1.2.3 序列分析，多态性序列对比及系统进化树分析 | 第25-26页 |
| 1.2.4 在不同组织中RPL29-1 基因mRNA的表达 | 第26-27页 |
| 1.2.5 RPL29-1 基因过表达载体及反义表达载体构建 | 第27-28页 |
| 1.2.6 RPL29-1 基因的原核表达载体构建 | 第28-29页 |
| 1.3 讨论 | 第29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 第二章 花生 β-NADH脱氢酶亚基 10B（β-ND10B）基因克隆表达分析及载体构建 | 第30-39页 |
| 2.1 材料和方法 | 第30-31页 |
| 2.1.1 材料 | 第30-31页 |
| 2.1.2 方法 | 第31页 |
| 2.2 结果与分析 | 第31-37页 |
| 2.2.1 β-ND10B基因cDNA序列的表征 | 第31-32页 |
| 2.2.2 β-ND10B基因的DNA序列 | 第32-33页 |
| 2.2.3 序列分析，多态性序列对比及系统进化树分析 | 第33-34页 |
| 2.2.4 在不同组织中 β-ND10B基因mRNA的表达 | 第34-35页 |
| 2.2.5 β-ND10B基因过表达载体及反义表达载体构建 | 第35-37页 |
| 2.2.6 β-ND10B基因的原核表达载体构建 | 第37页 |
| 2.3 讨论 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 第三章 花生CAX相互作用蛋白4亚型 1（CXIP4-1）基因克隆表达分析及载体构建 | 第39-49页 |
| 3.1 材料和方法 | 第39-41页 |
| 3.1.1 材料 | 第39-40页 |
| 3.1.2 方法 | 第40-41页 |
| 3.2 结果与分析 | 第41-47页 |
| 3.2.1 CXIP4-1 基因cDNA序列的表征 | 第41-42页 |
| 3.2.2 CXIP4-1 基因的DNA序列 | 第42页 |
| 3.2.3 序列分析，多态性序列对比及系统进化树分析 | 第42-44页 |
| 3.2.4 在不同组织中CXIP4-1 基因mRNA的表达 | 第44-45页 |
| 3.2.5 CXIP4-1 基因过表达载体及反义表达载体构建 | 第45-47页 |
| 3.2.6 CXIP4-1 基因的原核表达载体构建 | 第47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 利用SSR标记鉴定花生杂交F_1代真假杂种 | 第49-55页 |
| 4.1 材料和方法 | 第49-50页 |
| 4.1.1 材料 | 第49页 |
| 4.1.2 方法 | 第49-50页 |
| 4.1.2.1 基因组DNA提取 | 第49页 |
| 4.1.2.2 SSR标记筛选 | 第49页 |
| 4.1.2.3 F_1代杂种鉴定 | 第49-50页 |
| 4.1.2.4 叶片形态鉴定 | 第50页 |
| 4.2 结果与分析 | 第50-54页 |
| 4.2.1 亲本间SSR多态性标记筛选 | 第50页 |
| 4.2.2 F_1代真假杂种鉴定 | 第50-53页 |
| 4.2.3 叶片形态鉴定 | 第53-54页 |
| 4.3 讨论 | 第54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 第五章 利用AhMITE转座子分子标记鉴定花生F_1代真假杂种 | 第55-63页 |
| 5.1 材料和方法 | 第55-56页 |
| 5.1.1 材料 | 第55页 |
| 5.1.2 方法 | 第55-56页 |
| 5.1.2.1 基因组DNA提取 | 第55-56页 |
| 5.1.2.2 AhMITE标记筛选 | 第56页 |
| 5.1.2.3 F_1代杂种鉴定 | 第56页 |
| 5.2 结果 | 第56-62页 |
| 5.2.1 基因组DNA提取 | 第56-57页 |
| 5.2.2 亲本间AhMITE多态性标记筛选 | 第57页 |
| 5.2.3 F_1代真假杂种鉴定 | 第57-62页 |
| 5.3 讨论 | 第62页 |
| 5.4 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 缩略词表 | 第70-71页 |
| 作者简介 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
