中文摘要 | 第3-4页 |
英文摘要 | 第4-5页 |
1 绪论 | 第9-21页 |
1.1 屈曲花简介 | 第9-10页 |
1.2 黄酮类化合物简介 | 第10-18页 |
1.2.1 黄酮类化合物的结构与分类 | 第10-11页 |
1.2.2 黄酮类化合物的理化性质 | 第11-12页 |
1.2.3 黄酮类化合物的提取方法 | 第12-13页 |
1.2.4 黄酮类化合物的分离纯化方法 | 第13-15页 |
1.2.5 黄酮类化合物的鉴定方法 | 第15-16页 |
1.2.6 黄酮类化合物的生物活性 | 第16-17页 |
1.2.7 黄酮类化合物的抗氧化活性评价 | 第17-18页 |
1.3 本课题研究目的和研究内容 | 第18-21页 |
1.3.1 研究目的 | 第18-19页 |
1.3.2 研究内容 | 第19页 |
1.3.3 研究创新点 | 第19-20页 |
1.3.4 技术路线 | 第20-21页 |
2 超声波提取屈曲花种子总黄酮的工艺优化 | 第21-39页 |
2.1 引言 | 第21页 |
2.2 材料、试剂和仪器 | 第21-22页 |
2.2.1 材料 | 第21页 |
2.2.2 试剂 | 第21页 |
2.2.3 仪器 | 第21-22页 |
2.3 实验方法 | 第22-24页 |
2.3.1 样品超声提取流程 | 第22页 |
2.3.2 标准溶液的配制 | 第22页 |
2.3.3 标准曲线的绘制 | 第22-23页 |
2.3.4 样品中总黄酮的测定 | 第23页 |
2.3.5 总黄酮得率的计算 | 第23页 |
2.3.6 单因素试验 | 第23-24页 |
2.3.7 数据统计分析 | 第24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-36页 |
2.4.1 单因素实验 | 第24-27页 |
2.4.2 正交试验 | 第27-29页 |
2.4.3 响应面法 | 第29-36页 |
2.5 本章小结 | 第36-39页 |
3 大孔树脂吸附法分离纯化屈曲花种子总黄酮 | 第39-55页 |
3.1 引言 | 第39页 |
3.2 实验材料、试剂与仪器 | 第39-40页 |
3.2.1 材料 | 第39页 |
3.2.2 试剂 | 第39-40页 |
3.2.3 仪器 | 第40页 |
3.3 实验方法 | 第40-45页 |
3.3.1 纯化工艺流程 | 第40页 |
3.3.2 溶液的配置 | 第40-41页 |
3.3.3 大孔树脂的预处理 | 第41页 |
3.3.4 大孔树脂的筛选 | 第41-42页 |
3.3.5 X-5 树脂对屈曲花种子总黄酮纯化参数工艺优化 | 第42-43页 |
3.3.6 屈曲花种子总黄酮纯度的测定 | 第43-44页 |
3.3.7 屈曲花种子总黄酮化合物初步鉴定 | 第44页 |
3.3.8 数据统计分析 | 第44-45页 |
3.4 结果与分析 | 第45-51页 |
3.4.1 大孔树脂的筛选 | 第45页 |
3.4.2 X-5 树脂静态吸附动力学曲线 | 第45-46页 |
3.4.3 X-5 树脂静态吸附和解吸实验 | 第46-48页 |
3.4.4 X-5 树脂动态吸附和解吸实验 | 第48-50页 |
3.4.5 屈曲花种子总黄酮纯度测定 | 第50-51页 |
3.5 纯化后屈曲花黄酮类化合物初步定性鉴定 | 第51-52页 |
3.5.1 显色反应的鉴定结果 | 第51页 |
3.5.2 紫外光谱鉴定结果 | 第51-52页 |
3.6 本章小结 | 第52-55页 |
4 屈曲花种子总黄酮的抗氧化性能 | 第55-67页 |
4.1 引言 | 第55页 |
4.2 材料、试剂和仪器 | 第55-56页 |
4.2.1 材料 | 第55页 |
4.2.2 试剂 | 第55-56页 |
4.2.3 仪器 | 第56页 |
4.3 试剂的配制 | 第56-57页 |
4.4 实验方法 | 第57-61页 |
4.4.1 屈曲花种子总黄酮体外抗氧化实验 | 第57-58页 |
4.4.2 屈曲花种子总黄酮细胞抗氧化实验 | 第58-61页 |
4.4.5 数据统计分析 | 第61页 |
4.5 结果与分析 | 第61-66页 |
4.5.1 体外抗氧化实验 | 第61-62页 |
4.5.2 细胞抗氧化实验 | 第62-66页 |
4.6 小结 | 第66-67页 |
5 结论与展望 | 第67-69页 |
5.1 结论 | 第67页 |
5.2 展望 | 第67-69页 |
致谢 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-77页 |
附录 A. 作者在攻读硕士学位期间科研及发表的论文 | 第77页 |