摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第一章 绪论 | 第14-21页 |
1.氧化应激与2型糖尿病 | 第14-19页 |
1.1 氧化应激的标志物及其测定 | 第15-16页 |
1.2 氧化应激与胰岛 β 细胞 | 第16-18页 |
1.3 氧化应激与胰岛素抵抗 | 第18页 |
1.4 小结 | 第18-19页 |
2.使用中药血清药理学方法研究中药复方的意义 | 第19页 |
3.论文研究意义 | 第19-21页 |
第二章 FTZ含药血清的制备 | 第21-28页 |
1.实验材料和仪器 | 第21-22页 |
1.1 药品与试剂 | 第21-22页 |
1.2 实验仪器 | 第22页 |
1.3 实验动物 | 第22页 |
2.实验方法 | 第22-24页 |
2.1 FTZ含药血清与大鼠空白血清的制备 | 第22页 |
2.2 血清及FTZ供试品的制备 | 第22-23页 |
2.3 UPLC-MS检测条件 | 第23-24页 |
3.实验结果 | 第24-27页 |
3.1 大鼠空白血清与FTZ大鼠含药血清的制备 | 第24页 |
3.2 FTZ原药及血清UPLC-ESI-MS图谱 | 第24-27页 |
4.本章小结 | 第27-28页 |
第三章 FTZ含药血清改善INS-1 胰岛 β 细胞高糖引起氧化应激损伤的作用及机制探究 | 第28-47页 |
1.实验材料和仪器 | 第28-33页 |
1.1 材料 | 第28-32页 |
1.2 仪器设备 | 第32-33页 |
2.实验方法 | 第33-40页 |
2.1 细胞培养 | 第33-34页 |
2.2 细胞实验 | 第34-40页 |
3.数据分析 | 第40页 |
4.实验结果 | 第40-45页 |
4.1 FTZ含药血清对INS-1 胰岛 β 细胞增殖活性的影响 | 第40-41页 |
4.2 FTZ含药血清对INS-1 胰岛 β 细胞内ROS的影响 | 第41-43页 |
4.3 FTZ含药血清对INS-1 胰岛 β 细胞内MDA的影响 | 第43页 |
4.4 FTZ含药血清对INS-1 细胞内抗氧化蛋白酶表达水平的影响 | 第43-45页 |
5.本章小结 | 第45-47页 |
第四章 FTZ含药血清改善INS-1 胰岛 β 细胞氧化应激引起的凋亡作用及机制探究 | 第47-62页 |
1.实验材料和仪器 | 第47-48页 |
1.1 材料 | 第47-48页 |
1.2 仪器设备 | 第48页 |
2.实验方法 | 第48-53页 |
2.1 Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒检测INS-1 细胞凋亡率 | 第48-49页 |
2.2 检测INS-1 细胞的caspase9活性 | 第49-51页 |
2.3 检测INS-1 细胞caspase3活性 | 第51-53页 |
2.4 Western blot检测目的蛋白表达量 | 第53页 |
3.数据分析 | 第53页 |
4.实验结果 | 第53-61页 |
4.1 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞凋亡的影响 | 第53-56页 |
4.2 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞内caspase 9 活性的影响 | 第56页 |
4.3 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞内caspase 3 活性的影响 | 第56-57页 |
4.4 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞内Bcl-2 家族相关蛋白蛋表达的影响 | 第57-61页 |
5.本章小结 | 第61-62页 |
第五章 FTZ含药血清改善INS-1 胰岛 β 细胞葡萄糖刺激胰岛素释放作用及机制探究 | 第62-69页 |
1.实验材料和仪器 | 第62-63页 |
1.1 材料 | 第62-63页 |
1.2 仪器设备 | 第63页 |
2.实验方法 | 第63-65页 |
2.1 Western blot检测目的蛋白表达量 | 第63页 |
2.2 INS-1 胰岛 β 细胞分泌胰岛素的检测 | 第63-65页 |
3.数据分析 | 第65页 |
4.实验结果 | 第65-68页 |
4.1 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞内PDX-1 蛋白表达水平的影响 | 第65-66页 |
4.2 FTZ含药血清对氧化应激的INS-1 细胞内Glut2蛋白表达水平的影响 | 第66-67页 |
4.3 FTZ含药血清对INS-1 细胞葡萄糖刺激的胰岛素释放的影响 | 第67-68页 |
5.本章小结 | 第68-69页 |
第六章 结论与展望 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-80页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第80-81页 |
英文简略表 | 第81-84页 |
致谢 | 第84-85页 |