摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 绪论 | 第13-18页 |
1.1 课题背景 | 第13-14页 |
1.2 黄芩植物组织培养研究进展 | 第14-15页 |
1.3 黄芩主要活性物质的研究进展 | 第15-16页 |
1.3.1 黄芩主要活性物质 | 第15页 |
1.3.2 黄芩苷的概述 | 第15-16页 |
1.3.3 生产黄芩主要次生代谢产物的调控手段 | 第16页 |
1.4 黄芩植物组织培养过程中存在的问题 | 第16-17页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
2 黄芩细胞悬浮培养体系的建立 | 第18-28页 |
2.1 实验材料 | 第18-19页 |
2.1.1 植物材料 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-21页 |
2.2.1 黄芩愈伤组织的诱导及悬浮培养细胞的获得 | 第19页 |
2.2.2 黄芩细胞悬浮培养生长特性的研究 | 第19页 |
2.2.3 悬浮培养细胞次生代谢产物的抗氧化能力的测定 | 第19-21页 |
2.3 结果与分析 | 第21-27页 |
2.3.1 黄芩愈伤组织的获得 | 第21页 |
2.3.2 黄芩悬浮培养细胞的获得 | 第21-22页 |
2.3.3 黄芩悬浮培养细胞的生长特性 | 第22-23页 |
2.3.4 悬浮培养细胞的提取物的抗氧化作用 | 第23-27页 |
2.4 本章小结与讨论 | 第27-28页 |
3 诱导子对悬浮培养细胞的影响 | 第28-39页 |
3.1 实验材料 | 第28页 |
3.1.1 植物材料 | 第28页 |
3.1.2 实验仪器,试剂和药品 | 第28页 |
3.2 实验方法 | 第28-29页 |
3.2.1 诱导子茉莉酸甲酯和水杨酸对悬浮培养细胞的处理 | 第28页 |
3.2.2 诱导子诱导悬浮培养细胞生长特性的研究 | 第28-29页 |
3.2.3 悬浮培养细胞提取物抗氧化作用的测定 | 第29页 |
3.3 结果与分析 | 第29-37页 |
3.3.1 茉莉酸甲酯和水杨酸对悬浮培养细胞生长特性的影响 | 第29-32页 |
3.3.2 对悬浮培养细胞提取物抗氧化作用的影响 | 第32-37页 |
3.4 本章小结与讨论 | 第37-39页 |
4 降低黄芩再生苗玻璃化及其生根的研究 | 第39-47页 |
4.1 实验材料 | 第39页 |
4.1.1 植物材料 | 第39页 |
4.1.2 实验仪器,试剂和药品 | 第39页 |
4.2 实验方法 | 第39-40页 |
4.2.1 黄芩再生体系的建立 | 第39页 |
4.2.2 不同因素对黄芩苗玻璃化的影响 | 第39页 |
4.2.3 多效唑(PP333)对黄芩玻璃化和壮苗的影响 | 第39-40页 |
4.2.4 黄芩组培苗的生根实验 | 第40页 |
4.2.5 黄芩组培苗的室外移栽 | 第40页 |
4.2.6 数据统计与分析 | 第40页 |
4.3 结果与分析 | 第40-45页 |
4.3.1 不同培养条件对黄芩再生苗玻璃化的影响 | 第40-42页 |
4.3.2 不同浓度PP333对黄芩再生苗生长和玻璃化率的影响 | 第42-44页 |
4.3.3 IBA对黄芩再生苗生根的影响 | 第44页 |
4.3.4 黄芩再生苗生根后移栽 | 第44-45页 |
4.4 本章小结与讨论 | 第45-47页 |
5 黄芩再生苗玻璃化发生机制的研究 | 第47-58页 |
5.1 实验材料 | 第47页 |
5.1.1 植物材料 | 第47页 |
5.1.2 实验仪器、试剂和药品 | 第47页 |
5.2 实验方法 | 第47-49页 |
5.2.1 玻璃化苗和正常苗的形态学和超微结构的观察 | 第47页 |
5.2.2 玻璃化苗和正常苗的组织水含量、叶绿素和可溶性蛋白含量的测定 | 第47-48页 |
5.2.3 玻璃化苗和正常苗的活性氧的测定 | 第48页 |
5.2.4 玻璃化苗和正常苗的抗氧化酶和膜质过氧化的测定 | 第48-49页 |
5.3 结果与分析 | 第49-56页 |
5.3.1 正常苗和玻璃化苗的形态学和超微结构比较 | 第49-52页 |
5.3.2 黄芩正常再生苗和玻璃化苗的组织水含量、叶绿素和可溶性蛋白含量的比较 | 第52-54页 |
5.3.3 玻璃化苗和正常苗活性氧和膜脂过氧化的比较 | 第54-56页 |
5.3.4 玻璃化苗和正常苗的抗氧化酶的比较 | 第56页 |
5.4 本章小结与讨论 | 第56-58页 |
结论 | 第58-60页 |
参考文献 | 第60-67页 |
附录 | 第67-69页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第69-70页 |
致谢 | 第70-71页 |