| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 第一章 序言 | 第14-19页 |
| ·研究背景 | 第14-16页 |
| ·蟛蜞菊（Wedelia chinensis）化学成分的研究现状 | 第14-15页 |
| ·蟛蜞菊（Wedelia chinensis）药理作用的研究现状 | 第15-16页 |
| ·研究目的及意义 | 第16-17页 |
| ·研究内容 | 第17-19页 |
| ·蟛蜞菊水提物和醇提物抗肿瘤作用的研究 | 第17-18页 |
| ·蟛蜞菊抗肿瘤有效部位的分离及筛选 | 第18页 |
| ·蟛蜞菊抗肿瘤有效部位对肿瘤细胞凋亡及细胞周期的影响 | 第18页 |
| ·蟛蜞菊抗肿瘤有效部位作用机制的研究 | 第18-19页 |
| 第二章 蟛蜞菊水提物和醇提物抗肿瘤作用的研究 | 第19-25页 |
| ·前言 | 第19页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·细胞株 | 第19页 |
| ·主要试剂耗材 | 第19-20页 |
| ·主要仪器设备 | 第20页 |
| ·主要溶液配制 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-22页 |
| ·药物的制备 | 第20-21页 |
| ·细胞培养 | 第21页 |
| ·蟛蜞菊水提物及醇提物抗肿瘤活性的体外筛选 | 第21-22页 |
| ·统计分析 | 第22页 |
| ·实验结果 | 第22-24页 |
| ·蟛蜞菊醇提物和水提物抗肿瘤活性的体外筛选 | 第22-23页 |
| ·蟛蜞菊 70%乙醇提取物对多种肿瘤细胞增殖的抑制作用—敏感肿瘤细胞的体外筛选 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-25页 |
| 第三章 蟛蜞菊抗肿瘤有效部位的分离及筛选 | 第25-34页 |
| ·前言 | 第25页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·细胞株 | 第25页 |
| ·主要试剂耗材 | 第25-26页 |
| ·主要仪器设备 | 第26页 |
| ·主要溶液配制 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-27页 |
| ·药物制备 | 第26页 |
| ·细胞培养 | 第26-27页 |
| ·蟛蜞菊70%乙醇提取物各萃取相对CNE-1 细胞增殖抑制作用 | 第27页 |
| ·硅胶柱层析分离乙酸乙酯萃取相 | 第27页 |
| ·各次级部位对CNE-1 细胞增殖抑制作用 | 第27页 |
| ·统计分析 | 第27页 |
| ·实验结果 | 第27-31页 |
| ·蟛蜞菊 70%乙醇提取物各萃取相对 CNE-1 细胞增殖抑制作用——抗肿瘤初级有效部位的体外筛选 | 第27-28页 |
| ·蟛蜞菊 70%乙醇提取物各萃取相作用 48 h 后 CNE-1 细胞形态学观察 | 第28-29页 |
| ·不同浓度乙酸乙酯萃取相作用 48 h 后 CNE-1 细胞形态学观察 | 第29页 |
| ·硅胶柱层析分离乙酸乙酯萃取相后各次级部位对 CNE-1 细胞的抑制作用 | 第29-31页 |
| ·蟛蜞菊抗肿瘤有效部位 EA6 对 CNE-1 细胞增殖的抑制作用 | 第31页 |
| ·讨论 | 第31-34页 |
| 第四章 蟛蜞菊抗肿瘤有效部位（EA6）对CNE-1 细胞凋亡及细胞周期的影响 | 第34-43页 |
| ·前言 | 第34-35页 |
| ·实验材料 | 第35-36页 |
| ·细胞株 | 第35页 |
| ·主要试剂耗材 | 第35-36页 |
| ·主要仪器设备 | 第36页 |
| ·主要溶液配制 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·细胞培养 | 第36页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第36-37页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第37页 |
| ·Hoechst 染色检测细胞凋亡 | 第37-38页 |
| ·数据统计 | 第38页 |
| ·实验结果 | 第38-41页 |
| ·流式细胞术检测 EA6 对CNE-1 细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| ·流式细胞术检测 EA6 诱导CNE-1 细胞凋亡的作用 | 第39-40页 |
| ·Hoechst 染色检测 EA6 诱导 CNE-1 细胞凋亡的作用 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 EA6 诱导细胞G2/M 期阻滞的分子机制研究 | 第43-57页 |
| ·前言 | 第43-44页 |
| ·实验材料 | 第44-46页 |
| ·细胞株 | 第44页 |
| ·主要试剂耗材 | 第44页 |
| ·主要仪器设备 | 第44-45页 |
| ·主要溶液配制 | 第45页 |
| ·Real-time PCR 及 RT-PCR 引物 | 第45页 |
| ·Chk1/Chk2 siRNA | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-50页 |
| ·细胞培养 | 第46页 |
| ·药物处理 | 第46页 |
| ·siRNA转染 | 第46页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第46-47页 |
| ·细胞总RNA提取 | 第47-48页 |
| ·RT-PCR | 第48-49页 |
| ·Real-time PCR | 第49-50页 |
| ·PCR | 第50页 |
| ·数据统计 | 第50页 |
| ·实验结果 | 第50-55页 |
| ·si-Chk1和si-Chk2对Chk1和Chk2基因mRNA水平的影响 | 第50-51页 |
| ·RNA干扰Chk1和Chk2表达对EA6诱导CNE-1细胞G2/M周期阻滞的影响 | 第51-53页 |
| ·RNA干扰Chk1和Chk2表达对EA6抑制CNE-1细胞增殖的影响 | 第53-54页 |
| ·RNA干扰Chk1和Chk2表达对cyclin D1、cyclin B1和c-myc 基因表达的影响 | 第54页 |
| ·EA6 对不同肿瘤细胞中 c-myc 基因表达的影响 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55-57页 |
| 全文总结 | 第57-59页 |
| 研究展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 附录1 英文缩写语中文对照 | 第67-68页 |
| 附录2 攻读学位期间科研情况 | 第68-69页 |
| 文献综述 | 第69-75页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 附图 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
